Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto
Possui graduação (1982), mestrado (1987) e doutorado (1995) em Ciências Biológicas (Genética) pela Universidade Federal do Rio de Janeiro. Realizou seu pós-doutorado na França, Universidade de Medicina de Montpellier I (1997). Atualmente é Pesquisador Titular da Fundação Oswaldo Cruz, Chefe do Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas, do Instituto Oswaldo Cruz e Cientista do Nosso Estado 2018 pela FAPERJ. De março 2020 a fevereiro 2024 foi bolsista de produtividade 1B do CNPq. Foi coordenadora do Programa Integrado em Doença de Chagas da FIOCRUZ (2009/2011) e da Área de Pesquisa, Desenvolvimento e Inovação em Doença de Chagas do Instituto Oswaldo Cruz (2008/2010). Em outubro 2023 foi convidada a reintegrar a Coordenação do Programa Institucional em Doença de Chagas da Fiocruz (Fio-Chagas) com vigência até outubro 2025. Possui experiência nas áreas de Bioquímica (Biologia Molecular) e Parasitologia, com ênfase em Diagnóstico Molecular de Doenças Negligenciadas e Desenvolvimento Tecnológico, atuando principalmente nos seguintes temas: diagnóstico molecular de doenças infecciosas, genotipagem de Trypanosoma cruzi, doença de Chagas e avaliação terapêutica, estimativa de taxas de infecção natural e hábito alimentar em triatomíneos e flebotomíneos com viés epidemiológico. Coordenou o projeto de desenvolvimento e validação do protótipo de kit para o diagnóstico molecular da doença de Chagas (NAT-Chagas qPCR), registrado na ANVISA em Junho de 2022. Pela contribuição científica, a partir da análise do impacto de citações ao longo da carreira, foi elencada entre os 600 cientistas brasileiros mais influentes do mundo, de acordo com a análise do ranking mundial de cientistas (mais de 150.000 cientistas destacados) publicada no Journal Plos Biology, "Updated science-wide author databases of standardized citation indicators" em outubro 2020 (https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3000918). Em 2023, com o novo ranqueamento manteve o status permanecendo entre os 100.000 melhores cientistas do mundo, dentre os 979 brasileiros elencados (October 2023 data-update for "Updated science-wide author databases of standardized citation indicators"/Version 6 https://doi.org/10.17632/btchxktzyw.6).
Informações coletadas do Lattes em 09/11/2024
Acadêmico
Formação acadêmica
Doutorado em Ciências Biológicas (Genética)
1989 - 1995
Universidade Federal do Rio de Janeiro
Título: Utilização da reação em cadeia da polimerase (PCR) para a detecção do Trypanosoma cruzi no sangue de pacientes chagásicos crônicos
Orientador: Carlos Médicis Morel/ Patrick Wincker
Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil. Palavras-chave: PCR; diagnóstico; T cruzi; kDNA; Doença de Chagas.Grande área: Ciências BiológicasGrande Área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular. Setores de atividade: Saúde Humana; Produtos e Processos Biotecnológicos.
Mestrado em Ciências Biológicas (Genética)
1984 - 1987
Universidade Federal do Rio de Janeiro
Título: Clonagem e sequenciamento de um minicírculo presente na rede de DNA cinetoplástico de Trypanosoma cruzi, cepa Y, Ano de Obtenção: 1987
Orientador: Carlos Medicis Morel
Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil. Palavras-chave: minicírculo; DNA do cinetoplasto; sequenciamento; Trypanosoma cruzi; Doença de Chagas.Grande área: Ciências BiológicasSetores de atividade: Produtos e Processos Biotecnológicos.
Graduação em Ciências Biológicas Genética
1979 - 1982
Universidade Federal do Rio de Janeiro
Título: Localização de cistrons ribossomais em Chironomídeo sp. do Rio de Janeiro
Orientador: Lucille Floeter Winter/ Orilio Leoncini
Pós-doutorado
1995 - 1997
Pós-Doutorado. , Faculté de Medecine Université de Montpellier I, U.M.I, França. , Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas
Formação complementar
2008 - 2008
Standarization and validation of PCR for Chagas di. (Carga horária: 64h). , Instituto de Investigaciones en Ingenieria Genetica Y Biologia Molecular, INGEBI, Argentina.
2003 - 2003
Real time PCR. (Carga horária: 40h). , Applied Biosystems do Brasil, ABI, Brasil.
2002 - 2002
Manipulação de radioisótopos em pesquisa. (Carga horária: 40h). , Instituto Oswaldo Cruz, IOC, Brasil.
Idiomas
Inglês
Compreende Bem, Fala Bem, Lê Bem, Escreve Bem.
Espanhol
Compreende Bem, Fala Pouco, Lê Razoavelmente, Escreve Pouco.
Francês
Compreende Bem, Fala Bem, Lê Bem, Escreve Razoavelmente.
Áreas de atuação
Grande área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular/Especialidade: Diagnóstico Pela Reação Em Cadeia da Polimerase.
Grande área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Molecular e de Microorganismos/Especialidade: Projeto Genoma de Leishmania.
Grande área: Ciências Biológicas / Área: Parasitologia.
Grande área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular.
Organização de eventos
BRITTO, C ; HASSLOCHER, A. M. ; THOMPSON, J. ; FERNANDES, A. . Programa Integrado em Doença de Chagas da Fiocruz (PIDC). 2011. (Outro).
Schijman, Alejandro G. ; BRITTO, C ; Moreira, Otacílio Cruz ; YADON, Z. ; RIBEIRO, I. . Workshop internacional para padronização e validação analítica da PCR em Tempo Real para a quantificação de DNA de T. cruzi em sangue de indivíduos com doença de Chagas. 2011. (Outro).
BRITTO, C ; DANTAS, A. . Programa Integrado em Doença de Chagas - PIDC. 2010. (Outro).
BRITTO, C ; MOREIRA, O. C. ; VELAZQUEZ, E. ; RAMIREZ, J. D. ; MELO, M. F. A. D. ; FERREIRA, C. L. ; CARDOSO, M. A. ; RODRIGUES, A. C. M. ; MENDES, C. V. . Workshop para o Estabelecimento de um Protocolo Consenso de qPCR ? PCR em Tempo Real para o Estudo BENEFIT. 2010. (Outro).
Schijman, Alejandro G. ; BRITTO, C . Workshop para estandardização e validação da PCR na doença de Chagas. OMS/TDR, INGEBI-CONICET. 2008. (Outro).
Participação em eventos
V Encontro do IOC. 2011. (Encontro).
44o Congresso Brasileiro de Patologia Clínica/Medicina Laboratorial. MESA REDONDA - Diagnóstico Parasitológico, Imunológico e Molecular de Doenças Parasitárias/ Diagnóstico Etiológico da doença de Chagas. 2010. (Congresso).
5o Colegiado de Doutores do Instituto Oswaldo Cruz. 2010. (Encontro).
BENEFIT Steering Commitee Meeting. 2010. (Oficina).
III Seminário em Epidemiologia e Vigilância: tendências e perspectivas. 2010. (Seminário).
I Simpósio de Pesquisa e Inovação do Instituto Oswaldo Cruz.Atividades de pesquisa desenvolvidas pelo Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. 2010. (Simpósio).
Seminário da Rede Genômica e Proteômica PDTIS/VPPLR. 2010. (Seminário).
VII Encontro do Programa Integrado de Doença de Chagas da FIOCRUZ.Avanços na rede Diagnóstico. 2010. (Encontro).
XIV Encontro Anual do grupo Arthromint.Coordenador de mesas aleatórias. 2010. (Encontro).
13a Reunião de Pesquisa Aplicada em Leishmaniose. Pesquisa sobre a infecção natural e avaliação da competência vetorial de flebotomíneos (Diptera, Psychodidae, Phlebotominae) em área de ocorrência do primeiro caso autóctone de leishmaniose cutâneo difusa, Paraty, Estado do Rio de Janeiro, Brasil. 2009. (Congresso).
Seminário de Prospecção Científica e Tecnológica em Doenças Infecciosas e Parasitárias. 2009. (Seminário).
Simpósio Internacional Comemorativo do Centenário da Descoberta da Doença de Chagas.Usefulness of PCR for the establishment of drug efficacy: value and limitation. 2009. (Simpósio).
VI Encontro do Programa Integrado de Doença de Chagas da FIOCRUZ.Apresentação da área temática em diagnóstico da doença de Chagas. 2009. (Encontro).
Workshop da Rede de Plataformas Tecnológicas.Plataforma de PCR em Tempo Real. 2009. (Oficina).
XLV Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. Mesa redonda: Avanços biotecnológicos no diagnóstico da doença de Chagas. 2009. (Congresso).
I Congresso de Iniciação Científica da Biologia - Universidade Gama Filho. Desenvolvimento de um ensaio de PCR em tempo real para a medida da carga parasitária em indivíduos infectados pelo T. cruzi. 2008. (Congresso).
Simposio Internacional de Estandarización y validación del uso clínico de la PCR para detección de infección por T. cruzi.Mesa redonda: Estudio BENEFIT- Metodologia y logistica para el objectivo que involucra PCR. 2008. (Simpósio).
V Encontro do Programa Integrado de Doença de Chagas da Fiocruz.Apresentação da Rede de Diagnóstico (rede 03). 2008. (Encontro).
IV Encontro do Programa Integrado de Doença de Chagas da Fiocruz.Diagnóstico Molecular da doença de Chagas. 2007. (Encontro).
Meeting on the Strategic and Operational Aspects for the Clinical Development of Trypanocidal Drugs for Chagas Disease.Use of PCR to establish drug efficacy (value and limitations). 2007. (Oficina).
Reunião Internacional do Estudo BENEFIT.PCR aplicada ao estudo BENEFIT. 2007. (Encontro).
XI Reunião do Arthromint. 2007. (Oficina).
Desenvolvimento de reação de polimerização em cadeia em tempo real para a detecção dos parasitas da malária em indivíduos pauciparasitados: Comparação com o exame microscópico, optimal e PCR convencional. X Reunião Anual de Pesquisa em Malária. 2006. (Congresso).
Diagnóstico molecular da doença de Chagas.III Encontro do Programa Integrado de Doença de Chagas da FIOCRUZ. 2006. (Encontro).
Procedimentos de PCR para o estudo BENEFIT.BENEFIT International Meeting. 2006. (Encontro).
Diagnóstico molecular da doença de Chagas.II Encontro do Programa Integrado de Doença de Chagas da FIOCRUZ. 2005. (Encontro).
Identification of naturally infected Lutzomyia sp with Leishmania (Viannia) braziliensis in Rio de Janeiro revealed by a PCR multiplex linked non isotopic hybridization assay. VII Congreso Argentino de Protozoología y Enfermedades Parasitarias. 2005. (Congresso).
Molecular diagnosis of chronic Chagas disease - The state of art. VII Congreso Argentino de Protozoología y Enfermedades Parasitarias. 2005. (Congresso).
Reunião Nacional de Consensos Brasileiros sobre a Doença de Chagas.Consenso brasileiro para diagnóstico laboratorial da infecção pelo Trypanosoma cruzi. 2005. (Encontro).
Jornada de Iniciação Científica da FIOCRUZ.Jornada de Iniciação Científica das Unidades Instituto Oswaldo Cruz, Presidência e Bio-Manguinhos. 2004. (Oficina).
VIII Encontro do Grupo Arthromint.VIII Encontro do Grupo Arthromint. 2004. (Encontro).
Diagnóstico molecular da doença de Chagas: Estado da arte.Palestras do Centro de Estudos - Instituto Oswaldo Cruz. 2003. (Seminário).
Diagnóstico Molecular de Parasitos. XVIII Congresso Brasileiro de Parasitologia. 2003. (Congresso).
Mesa redonda Diagnosticando Parasitoses Teciduais. Congresso Brasileiro de Patologia Clínica e Medicina Laboratorial. 2003. (Congresso).
. IV Congresso Interno da FIOCRUZ. 2002. (Congresso).
.Simpósio Panamericano da FIOCRUZ. 2002. (Simpósio).
.Parasito em Foco: Perspectivas atuais da Sociedade Brasileira de Parasitologia. 2002. (Encontro).
Molecular diagnosis of Chagas disease.Segundo Simposio Internacional de Enfermedad de Chagas en Internet. 2002. (Simpósio).
X Reunião Anual de Iniciação Científica.X Reunião Anual de Iniciação Científica da FIOCRUZ. 2002. (Oficina).
Participação em bancas
BRITTO, C. Avaliação da infecção por Leishmania spp. em roedores silvestres caviomorfos (Rodentia: Histricognathi) e sua participação nos ciclos de transmissão em diferentes regiões do Brasil. 2013. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação da infecção experimental de camundongos suíços infectados com um isolado de Trypanosoma cruzi proveniente de surto oral da doença de Chagas em Santa Catarina, Brasil. 2013. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Ensaio molecular para diagnóstico e vigilância epidemiológica da Influenza A H1N1 no contexto sa saúde pública brasileira. 2011. Dissertação (Mestrado em Mestrado Profissional em Tecnologia de Imunobiológ) - Bio-Manguinhos/FIOCRUZ.
BRITTO, C. Construção e caracterização de linhagens de Trypanosoma cruzi como modelo de estudo da região 3' não traduzida (3'UTR): Importância do polimorfismo indel na regulação do RNA mensageiro do locus SB5P/TcUMSBP. 2011. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas (Biofísica)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Desenvolvimento e avaliação comparativa de metodologias baseadas na reação de PCR para o diagnóstico molecular e identificação especifica de agentes etiológicos da leishmaniose tegumentar que circulam em áreas endêmicas brasileiras. 2011. Dissertação (Mestrado em Medicina Tropical) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Estudos sobre a leishmaniose visceral americana (LVA) em Barra de Guaratiba, Estado do Rio de Janeiro. 2009. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Aspectos biológicos, moleculares e bioquímicos e susceptibilidade ao benznidazol de isolados silvestres de Trypanosoma cruzi. 2009. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Análise molecular dos genes dhfr e dhps associados à quimiorresistência do plasmodium falciparum de áreas de Luanda, Angola. 2008. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Caracterização genética dos grupos e subgrupos do Trypanosoma cruzi associados às formas clínicas da doença de Chagas em diferentes áreas endêmicas do Brasil. 2007. Dissertação (Mestrado em Medicina Tropical e Infectologia) - Universidade Federal do Triângulo Mineiro.
BRITTO, C. Detecção e caracterização molecular de rotavírus em Igarapés da cidade de Manaus, Amazônia Central. 2007. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRAZIL, R. P.; SORGINE, M. H. F.; MELLO NETO, C. B.;BRITTO, C. Genética molecular do gene vrille e análise da atividade locomotora em Lutzomyia longipalpis (Lutz & Neiva, 1912) (Díptera: Psychodidae: Phlebotominae) - participação como suplente. 2006. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, CSCHATZMAYR, H. G.; CUNHA, R. V.. Implantação da técnica de PCR em tempo real (sistema TaqMan) para Dengue tipo 3 (DENV-3) e vigilância virológica no estado do Rio de Janeiro nos anos 2004-2005. 2006. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BONALDO, M.;PEIXOTO, A. A.; MAZUR, C.;BRITTO, C. Aplicação de PCR em tempo real para avaliar viremia em humanos e primatas não-humanos imunizados com a vacina de febre amarela 17DD e o vírus recombinante 17D-DENV (participação como suplente). 2006. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C; ZALIS, M. G.; MEDINA-ACOSTA, E.. Padronização de reações de polimerização em cadeia (PCRs) convencional e em tempo real gênero específicas para a detecção de Plasmodium sp em indivíduos pauciparasitados. 2006. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Estudo da regulação e da expressão de genes de reparo de DNA de Escherichia coli em resposta a quimioterápicos anti-tumorais. 2006. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas (Biofísica)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Estudo de expressão gênica de células humanas frente a infecção por Mycobacterium leprae. 2005. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas (Biofísica)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Desenvolvimento e padronização de um ensaio de PCR por transcrição reversa em tempo real para a detecção e quantificação dos três sorotipos de vírus da dengue. 2005. Dissertação (Mestrado em Química Biológica) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Epidemiologia molecular de Staphylococcus aureus resistentes e sensíveis à meticilina no Rio de Janeiro (participação como suplente). 2005. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Detecção molecular (DNA) de Onchocerca volvulus em vetores em relação a distribuição da ivermectina na Amazônia brasileira. 2004. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Diagnóstico molecular de dirofilaríase pulmonar humana causada por Dirofilaria immitis baseado na sequencia do espaçador ribossomal ITS2. 2004. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Estudo da diversidade gênica da proteína potencialmente vacinal MSP-2 na infecção de indivíduos com malária, residentes em áreas endêmicas dos Estados do Pará e Rondônia. 2004. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Caracterização molecular e complementação funcional do gene lamap: membro da família das AP-endonucleases em Leishmania amazonensis. 2004. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. PCR em tecidos-órgãos na detecção da infecção chagásica crônica em cães infectados com as cepas Berenice-62 e Berenice-78 de Trypanosoma cruzi e caracterização fenotípica e molecular do parasita. 2002. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas) - Universidade Federal de Ouro Preto.
BRITTO, C; BELLO, A.. Análise do cariótipo molecular de Leishmania (Viannia) naiffi Lainson & Shaw, 1989. 2000. Dissertação (Mestrado em Biologia (Biociências Nucleares)) - Universidade do Estado do Rio de Janeiro.
NOGUEIRA, N. F. S.; JANSEN, A.; PEIXOTO, A. A.;BRITTO, C. Efeitos da decapitação e da terapia com ecdisona sobre a metaciclogênese do Trypanosoma cruzi (clone Dm28C) em Rhodnius prolixus. 2000. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação da técnica da reação em cadeia da polimerase no diagnóstico de leishmaniose tegumentar americana. 1998. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Estudo do sistema profenoloxidase de Rhodnius prolixus Stal, 1859 na interação com Trypanosoma rangeli. 1998. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Detecção de DNA de Leishmania através da técnica da PCR em biopsias de pacientes antes e após tratamento específico. 1997. Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, CONSTANÇA. Identificação Molecular de Fontes Alimentares de Triatomíneos para o estudo da Dinâmica da Transmissão da Tripanossomíase Americana. 2022. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Genes humanos candidatos à associação com perfil de resistência e susceptibilidade à malaria em populações do Rio Negro, AM. 2012. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Genética)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Marcadores de reparo de DNA em pacientes infantis portadores de Leucemia Linfóide Aguda do Estado do Rio de Janeiro e correlações com aspectos clínicos pós-quimioterapia. 2011. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Biofísica)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Efeitos de agentes físico-químicos em Trypanosoma cruzi clone CL-Brener: uma abordagem para o estudo de genes hipotéticos a partir da 5'UTR. 2011. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação laboratorial e clínica de pacientes chagásicos tratados e não tratados residentes em Berilo, Vale do Jequitinhonha, MG. 2011. Tese (Doutorado em Programa de Pós-graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Federal de Ouro Preto.
BRITTO, C. Estudo da quantificação de soja geneticamente modificada em alimentos pela técnica de PCR em Tempo Real. 2010. Tese (Doutorado em Vigilância Sanitária) - Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde/FIOCRUZ.
BRITTO, C. Análise comparativa dos ritmos de atividade locomotora e expressão circadiana de Aedes aegypti e Culex quinquefasciatus. 2010. Tese (Doutorado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Interação Trypanosoma cruzi-célula hospedeira: danos moleculares e celulares e o efeito de amiodarona na recuperação de cardiomiócitos infectados. 2010. Tese (Doutorado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Estudos sobre a localização e o envolvimento da prolina racemase na biologia do Trypanosoma cruzi: participação nos processos de invasão, proliferação e diferenciação do parasito. 2009. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Expressão de genes de resistência intrínsecos e adquiridos em Pseudomonas aeruginosas e funcionalidade de cassetes gênicos associados a integrons classe 1. 2009. Tese (Doutorado em Doutorado em Biologia Parasitária) - One Cursos - Treinamento e Desenvolvimento.
BRITTO, C. Caracterização e análise funcional da proteína TcZFP2: uma proteína com o domínio CCCH de interação com o íon zinco envolvida na modulação da estabilidade de RNAs mensageiros do protozoário Trypanosoma cruzi.. 2009. Tese (Doutorado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Estudo sorológico e determinantes de risco para toxoplasmose em gestantes, seus conceptos e grupamentos familiares no Município de Miracema, Noroeste Fluminense (2003-2006). 2008. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Desenvolvimento e avaliação de um sistema baseado em PCR em Tempo Real para o diagnóstico da infecção por Leishmania (Leishmania) infantum.. 2008. Tese (Doutorado em Saúde Pública) - Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães.
BRITTO, C. Caracterização dos genes Rab 5 e Rab-like4 de Trypanosoma cruzi. 2005. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Biofísica)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Resposta de defesa em Cochliomyia hominivorax (Coquerel, 1858) e Chrysomya megacephala (Fabricius, 1794) (Díptera: Calliphoridae) fatores humorais e celulares (participação como suplente). 2005. Tese (Doutorado em Ciências Veterinárias) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. Seleção de transcritos diferenciais pertencentes às duas linhagens filogenéticas principais de Trypanosoma cruzi (participação como suplente). 2005. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação de novas técnicas diagnósticas em onicomicoses. 2001. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
MORGADO, M.; RUMJANECK, F.; PORTILLO, H.; LOURENCO, R.;OELEMANN, W.BRITTO, C. Avaliação do polimorfismo genético da proteína 2 de superfície do merozoíta (MSP-2) em isolados de Plasmodium falciparum: estudo do impacto na antigenicidade e da correlação com dados epidemiológicos e clínico-laboratoriais de indivíduos com malária aguda residentes na área endêmica de Peixoto de Azevedo (MT-Brasil). 2000. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Aspectos ecológicos de Triatoma vitticeps (Stal, 1859) (Hemiptera, Reduviidae), com caracterização de amostras de Trypanosoma cruzi Chagas 1909 (Kinetoplastida, Trypanosomatidae) isoladas deste triatomíneo, no município de Santa Maria Madalena, estado do Rio de Janeiro.. 2000. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, CFRAGOSO, S. P.. Estudo da influência de diferentes parâmetros no processo fermentativo para a super-expressão de proteínas recombinantes em Escherichia coli. 1998. Tese (Doutorado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, CONSTANÇA. Competência vetorial e comportamento de alimentação-excreção de Triatoma rubrovaria (Blanchard, 1843) (Hemiptera: Reduviidae) infectado com Trypanosoma cruzi TcVI. 2022. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade do Estado do Rio de Janeiro.
BRITTO, C. A expressão do gene da ecto-NTPDase I em diferentes sub-populações de Trypanosoma cruzi. 2011. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Estácio de Sá.
BRITTO, C. Desenvolvimento de um ensaio de PCR em tempo real e PCR convencional para diagnóstico da doença de Chagas: avaliação de metodologia baseada no alvo molecular de kDNA. 2009. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Gama Filho.
BRITTO, C; SANTOS, E. L.; ARRUDA, C. C. P.. Pesquisador em Saúde Pública. 2011. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, CFERNANDES, O.. Concurso Público da Fundação Oswaldo Cruz. 2006. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. COmitê Institucional do PIBITI 2011. 2011. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Comitê de análise de resumos da 63a Reunião Anual da SBPC. 2011. Sociedade Brasileira para o Progresso da Ciência - São Paulo.
BRITTO, C. Avaliação de seminários discente do Programa de Biologia Parasitária do Programa de Pós-Graduação Stricto Senso do Instituto Oswaldo Cruz. 2010. Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação de trabalhos inscritos na 18a Reunião Anual de Iniciação Científica - RAIC/FIOCRUZ. 2010. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação do Programa Institucional de Bolsas de Iniciação Científica PIBIC/FIOCRUZ/CNPq. 2009. Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação de seminários discente do Programa de Biologia Parasitária da Pós-Graduação Stricto Sensu do Instituto Oswaldo Cruz. 2009. Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Programa de Pesquisador Visitante Junior. 2008. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação de seminários discentes do Curso de Pós Graduação em Biologia Parasitária. 2008. Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, C. Avaliação de seminários discentes do Programa de Pós-Graduação em Vigilância Sanitária do Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde/FIOCRUZ. 2008. Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde/FIOCRUZ.
BRITTO, C. Avaliação de seminários discentes do Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. 2007. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, CFERNANDES, O.. Programa Pesquisador Visitante. 2007. Fundação Oswaldo Cruz.
BRITTO, CBrandão, A. Banca avaliadora de projeto de Mestrado do curso de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. 2006. Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, CBrandão, A. Qualificação oral de Mestrado em Biologia Parasitária. 2006. Instituto Oswaldo Cruz.
BRITTO, CSOARES, M. J.. Avaliação de seminários discentes do Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. 2006. Instituto Oswaldo Cruz.
Comissão julgadora das bancas
COURA, J. R.. A reação em cadeia da Polimerase na detecção de Trypanosoma cruzi no sangue de pacientes chagásicos crônicos. 1995. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Genética)) - Universidade Federal do Rio de Janeiro.
Orientou
Estudo da fauna de flebotomíneos (Diptera: Psychodidae) e seu papel no ciclo de transmissão de Leishmania spp; no município de Santos, São Paulo, Brasil; Início: 2023; Dissertação (Mestrado profissional em PÓS GRADUAÇÃO STRICTO SENSU EM VIGILÂNCIA E CONTROLE DE VETORES) - Fundação Oswaldo Cruz; (Orientador);
Estudo dos elementos envolvidos no ciclo de transmissão de Leishmania spp; no município de Patos de Minas, Minas Gerais; Início: 2023; Dissertação (Mestrado profissional em PÓS GRADUAÇÃO STRICTO SENSU EM VIGILÂNCIA E CONTROLE DE VETORES) - Fundação Oswaldo Cruz; (Orientador);
Estudo da fauna de flebotomíneos (Diptera: Psychodidade, Phlebotominae) e seu papel no ciclo de transmissão de Leishmania spp; no município de Marilândia, Espírito Santo; Início: 2021; Dissertação (Mestrado profissional em VIGILÂNCIA E CONTROLE DE VETORES) - Instituto Oswaldo Cruz; (Orientador);
Busca por marcadores moleculares diferencialmente expressos ao longo da metaciclogênese de Leishmania (Viannia) braziliensis no trato digestório do inseto vetor a fim de auxiliar estudos de competência vetorial de espécies de flebotomíneos; Início: 2024; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; (Orientador);
Perspectiva molecular para estudos de comprovação da competência vetorial de espécies de flebotomíneos (Diptera: Psychodidae) como vetores de Leishmania sp; ; Início: 2023; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; (Orientador);
Caracterização ecoepidemiológica da doença de Chagas em áreas rurais dos Municípios de Pedro II e Oeiras, estado doPiauí; Início: 2020; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; (Orientador);
Início: 2019; Fundação Oswaldo Cruz, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ;
Início: 2019; Fundação Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior;
Ecoepidemiologia das leishmanioses no Piauí: Inferência sobre taxas de infecção do inseto vetor por Leishmania spp; , pesquisa de fonte alimentar e caracterização molecular dos parasitos; Início: 2022; Iniciação científica (Graduando em Farmácia) - Sociedade Unificada de Ensino Augusto Motta, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; (Orientador);
Do campo ao laboratório: ferramentas moleculares para o estudo de insetos vetores de Trypanosoma cruzi; Início: 2023; Orientação de outra natureza; Instituto Oswaldo Cruz; Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; (Orientador);
Avaliação de marcadores moleculares expressos nas formas promastigotas metacíclicas de Leishmania (Leishmania) infantum através do uso de um modelo experimental in vivo de Lutzomyia longipalpis; 2024; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Estudo da ecoepidemiologia das leishmanioses no município de Barra do Piraí, estado do Rio de Janeiro, tendo como foco o inseto vetor; 2022; Dissertação (Mestrado em VIGILÂNCIA E CONTROLE DE VETORES) - Instituto Oswaldo Cruz, ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Estudo de marcadores moleculares estágio-específicos de Leishmania (Viannia) braziliensis ao longo de seu ciclo biológico no inseto vetor; 2022; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Fundação Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Análise do perfil de trans-splicing de genes de trans-sialidases nas formas epimastigotas e tripomastigotas de três principais DTUs de Trypanosoma cruzi (TcI, TcII, TcVI); 2020; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Ensaios moleculares quantitativos e baseados em temperatura de dissociação do DNA para diagnóstico específico da infecção por Leishmania spp; ,; 2018; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
ABUNDÂNCIA DE Panstrongylus geniculatus (Latreille, 1811) (HEMIPTERA: REDUVIIDAE: TRIATOMINAE) E PREVALÊNCIA DE INFECÇÃO COM TRIPANOSSOMATÍDEOS NA VILA DE NOVO REMANSO, ITACOATIARA, AMAZONAS; 2018; Dissertação (Mestrado em Programa de Pós-Graduação em Zoologia) - Universidade Federal do Amazonas, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
ESTUDO DE AVALIAÇÃO DE TAXAS DE INFECÇÃO E CARGA PARASITÁRIA DE TRIATOMÍNEOS NATURALMENTE INFECTADOS POR TRYPANOSOMA CRUZI EM DOIS BIOMAS BRASILEIROS ATRAVÉS DO USO DE ENSAIOS MOLECULARES BASEADOS NA PCR; 2016; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Utilização de técnicas moleculares para avaliação da carga parasitária de amostras de insetos triatomíneos por Trypanosoma cruzi; 2016; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Acompanhamento da parasitemia, dos níveis sorológicos e da evolução clínica de portadores da doença de Chagas crônica residentes no Mato Grosso do Sul onze anos após tratamento com benznidazol; 2013; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Estudo da fauna e avaliação diagnóstica de infecção natural por Leishmania spp; de flebotomíneos (Diptera: Psychodidae) do município de Rio Branco (Acre, Brasil) empregando ensaios moleculares; 2013; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Padronização e validação de metodologia de amplificação genômica quantitativa para o vírus de febre amarela em amostras clínicas e no acompanhamento da cinética de replicação viral in vitro; 2012; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Determinação da relevância da cruzipaína na interação de Trypanosoma cruzi com seu hospedeiro invertebrado; 2010; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
AVALIAÇÃO DA EFICÁCIA DA REAÇÃO EM CADEIA DA POLIMERASE NA DETECÇÃO DE DNA DE Trypanosoma cruzi EM AMOSTRAS DE SORO E SANGUE DE PACIENTES CHAGÁSICOS CRÔNICOS; 2010; Dissertação (Mestrado em Pós-graduação Stricto Sensu em Saúde Pública) - Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Análise da região 5' não traduzida (5' UTR) em sequencias anotadas como trans-sialidase no genoma de Trypanosoma cruzi e avaliação da expressão gênica nos grupos populacionais do parasito; 2009; Dissertação (Mestrado em Ciências Médicas) - Universidade do Estado do Rio de Janeiro, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
ENVOLVIMENTO DAS METALOPROTEINASES DE MATRIZ (MMP-2 E MMP-9) NA PATOGÊNESE DA LESÃO NEURAL DA HANSENÍASE; 2008; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Detecção de Mycobacterium leprae por PCR para o suporte no diagnóstico clínico da hanseníase; 2005; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Implementação da PCR multiplex associada à hibridização não-radioativa na detecção de DNA de Leishmania subgênero Viannia em flebótomos vetores das leishmanioses; 2004; Dissertação (Mestrado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Definição de parâmetros epidemiológicos e parasitológicos da doença de Chagas em Santander- Colômbia, e características moleculares de seu agente etiológico; 2003; 0 f; Dissertação (Mestrado em Pós Graduação em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Organização Mundial da Saúde; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Caracterização Molecular, Biologia, Ecologia e Epidemiologia do Trypanosoma evansi; 2003; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Localização genômica e caracterização molecular parcial da proteína TcJ6 (HSP40/DnaJ-like) em diferentes espécies da família Trypanosomatidae; 2003; Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
PERSPECTIVAS ECOEPIDEMIOLÓGICAS DAS LEISHMANIOSES NO ESTADO DO PIAUÍ: PESQUISA DE FONTE ALIMENTAR, TAXAS DE INFECÇÃO POR Leishmania spp; E COMPETÊNCIA VETORIAL DE FLEBOTOMÍNEOS; 2024; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação da importância epidemiológica de espécies do subcomplexo Triatoma rubrovaria a partir da análise de competência vetorial e hábito alimentar; 2021; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
?Estudo da associação de marcadores para Trypanosoma cruzi e humanos em uma coorte de pacientes com diferentes formas clínicas da doença de Chagas crônica; 2021; Tese (Doutorado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz, Instituto Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Epidemiologia da Leishmaniose Tegumentar no Estado do Acre: Identificação da fauna flebotominica, preferência alimentar e caracterização de Leishmania spp; circulantes; 2017; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Quantificação de DNA de Trypanosoma cruzi em soro e potencial uso das 5? UTRs da família gênica de trans-sialidases para a genotipagem do parasito como complemento ao diagnóstico molecular da infecção; 2015; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
VÍRUS DE RNA EM TRIPANOSSOMATÍDEOS MONOXÊNICOS; 2014; Tese (Doutorado em Biology and Ecology, Faculty of Science) - Technical University de Ostrava, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Os sítios adicionais de trans-splicing na 5' UTR dos genes trans-sialidase de Trypanosoma cruzi:efeitos na tradução de genes reporter em extrato de síntese protéica acelular; 2013; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Marcadores de reparo de DNA em pacientes infantis portadores de Leucemia Linfóide Aguda do Estado do Rio de Janeiro e correlações com aspectos clínicos pós-quimioterapia; 2011; Tese (Doutorado em Ciências Biológicas - Biofísica) - Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Coorientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação de infecção natural de flebotomíneos (Díptera: Psychodidae) por Leishmania spp; empregando ensaios de PCR multiplex e PCR em tempo real; 2010; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
A reação em cadeia da polimerase (PCR) como ferramenta molecular no diagnóstico da toxoplasmose aguda; 2006; Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
2017; Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
2015; Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
2012; Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
2009; Fundação Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Gestão do Programa Integrado de Doença de Chagas da Fiocruz; 2009; Fundação Oswaldo Cruz, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
2009; Fundação Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Práticas laboratoriais em diagnóstico da doença de Chagas crônica pela PCR; 2006; Monografia; (Aperfeiçoamento/Especialização em Programa de Estágio Curricular) - Fundação Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
PCR como ferramenta de diagnóstico na infecção chagásica crônica; 2005; Monografia; (Aperfeiçoamento/Especialização em Programa de Estágio Curricular) - Fundação Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento do protótipo de um kit para o diagnóstico molecular e avaliação da carga parasitária em pacientes com Doença de Chagas; 2017; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Detecção e quantificação de DNA do Trypanosoma cruzi em sangue de pacientes com cardiomiopatia chagásica crônica; 2016; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio de Janeiro; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de um ensaio de PCR em Tempo Real para a medida da carga parasitária e tipagem molecular de Trypanosoma cruzi: comparação entre os sistemas TaqMan e SYBR Green; 2014; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
EPIDEMIOLOGIA MOLECULAR: AVALIAÇÃO DE INFECÇÃO NATURAL POR Trypanosoma cruzi EM TRIATOMÍNEOS SILVESTRES, DE ALGUMAS REGIÕES DO BRASIL, USANDO PCR multiplex; 2013; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Abi - Ciências Biológicas) - Universidade Federal Fluminense, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
DESENVOLVIMENTO DE UM ENSAIO MOLECULAR DE PCR MULTIPLEX PARA A AVALIAÇÃO DE INFECÇÃO NATURAL DE TRIATOMÍNEOS POR Trypanosoma cruzi; 2011; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Biomedicina) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de um ensaio de PCR em tempo real e PCR para diagnóstico da doença de Chagas: avaliação de metodologias baseadas no alvo molecular de kDNA; 2009; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Gama Filho, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Aplicação da PCR na avaliação da eficácia terapêutica do benzanidazol em pacientes chagásicos crônicos; 2007; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Biomedicina) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
PCR como ferramenta complementar a sorologia no diagnóstico da infecção chagásica humana; 2006; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Biomedicina) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Comparação da PCR com os testes de xenodiagnóstico e ELISA-recombinante na avaliação da eficácia do uso de benzanidazol no tratamento de pacientes chagásicos crônicos; 2003; 0 f; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Biomedicina) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro, Fundação Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Diagnóstico Molecular da Doença de Chagas pela Técnica da Reação em Cadeia da Polimerase (PCR) e seu Potencial de Aplicação no Acompanhamento da Quimioterapia Específica; 2001; 0 f; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Biomedicina) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro, Fundação Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desempenho da Técnica da Reação em Cadeia da Polimerase (PCR) no Diagnóstico Molecular da Doença de Chagas Crônica em Duas Áreas Endêmicas do Brasil; 2001; 0 f; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Aplicação da Reação em Cadeia da Polimerase na Doença de Chagas; 2001; 0 f; Trabalho de Conclusão de Curso; (Graduação em Medicina Veterinária) - Universidade Metropolitana de Santos; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Taxonomia molecular e avaliação da competência vetorial de espécies do subcomplexo Triatoma rubrovaria; 2022; Iniciação Científica - Instituto Oswaldo Cruz, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Ensaios moleculares aplicados ao rastreamento de infecção natural e estudo de fonte alimentar em triatomíneos e flebotomíneos coletados em áreas endêmicas de doença de Chagas e Leishmanioses no Brasil; 2022; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - IBMR, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
DESENVOLVIMENTO DE UM PROTÓTIPO DE KIT TRIPLEX PARA O DIAGNÓSTICO MOLECULAR E AVALIAÇÃO DA CARGA PARASITÁRIA EM PACIENTES COM DOENÇA DE CHAGAS; 2018; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade do Grande Rio, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento e Padronização de um ensaio de PCR convencional no formato duplex para o diagnóstico de pacientes portadores da doença de Chagas crônica; 2018; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - IBMR, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação de infecção natural por Leishmania spp; e estudo da fonte alimentar em flebotomíneos (Díptera: Psychodidae) coletados em áreas endêmicas de leishmanioses, empregando ensaios de PCR-multiplex e sequenciamento; 2018; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - IBMR, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação de infecção natural por Leishmania spp e estudo da fonte alimentar em flebotomíneos (Diptera: Psychodidae) coletados em áreas endêmicas de leishmanioses, empregando ensaios de PCR multiplex e sequenciamento; 2018; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - IBMR, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Pesquisa de Fonte Alimentar em Insetos Vetores das Leishmanioses e da Doença de Chagas nas regiões Norte e Sul do Brasil; 2018; Iniciação Científica; (Graduando em Farmácia) - Universidade Federal Fluminense, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
DESENVOLVIMENTO DE UM PROTÓTIPO DE KIT PARA O DIAGNÓSTICO MOLECULAR E AVALIAÇÃO DA CARGA PARASITÁRIA EM PACIENTES COM DOENÇA DE CHAGAS; 2017; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de PCR em tempo real para o diagnóstico molecular e avaliação da carga parasitária em pacientes portadores da doença de Chagas; 2016; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativo (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas; 2016; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas; 2015; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Pesquisa de Fonte Alimentar em Insetos Vetores das Leishmanioses e da Doença de Chagas nas regiões Norte e Sul do Brasil; 2015; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade Veiga de Almeida, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Ecoepidemiologia da leishmaniose tegumentar no município de Brasiléia, Acre: Identificação da fauna flebotomínica, e caracterização das Leishmania spp; circulantes; 2015; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - IBMR, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação de infecção natural em flebotomíneos vetores das leishmanioses; 2014; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
AVALIAÇÃO COMPOSICIONAL DAS 5? UTRS DA FAMÍLIA DE TRANS-SIALIDASES DE CEPAS REPRESENTATIVAS DE DIFERENTES DTUS DE TRYPANOSOMA CRUZI; 2014; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Eco-epidemiologia da Leishmaniose Tegumentar nos municípios de Rio Branco e Brasiléia, Acre: Identificação da fauna flebotomínica, preferência alimentar e caracterização de Leishmania spp; circulantes; 2013; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - Instituto Brasileiro Medicina Reabilitação, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
EFEITO DO TRATAMENTO COM SELÊNIO NA PROGRESSÃO DA CARDIOPATIA NA DOENÇA DE CHAGAS: ENSAIO CLÍNICO EM PACIENTES; 2011; Iniciação Científica; (Graduando em Farmácia) - Universidade Federal do Rio de Janeiro, Fundação para o Desenvolvimento Científico e Tecnológico em Saúde; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
DIAGNÓSTICO MOLECULAR E AVALIAÇÃO DA CARGA PARASITÁRIA EM TRIATOMÍNEOS SILVESTRES INFECTADOS POR Trypanosoma cruzi; ; 2011; Iniciação Científica; (Graduando em Abi - Ciências Biológicas) - Universidade Federal Fluminense, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de um ensaio de PCR em Tempo-Real para a medida da carga parasitária em indivíduos infectados pelo Trypanosoma cruzi; 2010; Iniciação Científica; (Graduando em Biomedicina) - Universidade Severino Sombra, Instituto Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
DESENVOLVIMENTO DE UM ENSAIO DE PCR EM TEMPO REAL PARA A MEDIDA DA CARGA PARASITÁRIA E TIPAGEM MOLECULAR DE TRYPANOSOMA CRUZI: COMPARAÇÃO ENTRE OS SISTEMAS TAQMAN E SYBR GREEN; 2010; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas com Habilitação em Biotecnolog) - Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação de infeção Natural de flebotomíneos(Dípra: Psychodidaae) por Leishmania spp coletados no município de Porto Alegre (RS) empregando ensaios de PCR-multiplex; 2009; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade Veiga de Almeida, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Ensaios moleculares para avaliação de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi empregando PCR multiplex e PCR em tempo real; 2008; Iniciação Científica; (Graduando em Biologia) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Estudo de Avaliação de eficácia terapeutica por benzonidazol no tratamento da doença de Chagas crônica cardíaca empregando metodologia molecular diagnóstica baseada na reação em cadeia da polimerase; 2008; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Faculdades Integrada Maria Theresa, Instituto Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Doença de Chagas no estado do Piauí, Brasil; Avaliação da prevalência e da evolução da parasitemia pela PCR; 2007; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade Santa Úrsula, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Diagnóstico molecular da infecção chagásica crônica; 2005; Iniciação Científica; (Graduando em Biologia) - Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desempenho da técnica da reação em cadeia da polimerase no diagnóstico da doença de Chagas crônica no Estado do Piauí, Brasil; 2004; Iniciação Científica; (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade Santa Úrsula, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento da tecnologia TaqMan para a medida da carga parasitária em pacientes chagásicos submetidos à tratamento específico; 2002; 0 f; Iniciação Científica; (Graduando em Farmácia Industrial) - Universidade Federal Fluminense, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Diagnóstico da Doença de Chagas por PCR; 1999; 0 f; Iniciação Científica; (Graduando em Engenharia Química) - Universidade Federal do Rio de Janeiro, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Aplicação da PCR no monitoramento de tratamento específico anti T; cruzi; 1999; 0 f; Iniciação Científica; (Graduando em Farmácia) - Universidade Federal Fluminense, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Eco-epidemiologia da Leishmaniose Tegumentar nos municípios de Rio Branco e Brasiléia, Acre; 2016; Orientação de outra natureza; (Graduação) - Colégio Pedro II; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Análise da composição da região 5? UTRs da família de trans-sialidades da cepa CL Brener de Trypanosoma cruzi; 2014; Orientação de outra natureza; (Graduação) - Colégio Pedro II; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Desenvolvimento de um ensaio de PCR em Tempo Real para estimativa da carga parasitária em pacientes acometidos pela doença de Chagas; 2011; Orientação de outra natureza; (Programa INOVATEC) - Fundação Oswaldo Cruz, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Convênio FIOCRUZ / FAPERJ para Técnicos e Tecnologistas - Avaliação de infecção natural de flebotomíneos por Leishmania spp; empregando ensaios de PCR multiplex e PCR em Tempo Real; 2009; Orientação de outra natureza; (Convênio FIOCRUZ / FAPERJ para Técnicos e Tecnolog) - Fundação Oswaldo Cruz, Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Uso da PCR na avaliação da eficácia terapêutica em pacientes chagásicos crônicos com cardiomiopatia (Estudo BENEFIT); 2009; Orientação de outra natureza; (Apoio Técnico) - Fundação para o Desenvolvimento Científicio e Tecnológico em Saúde, Fundação para o Desenvolvimento Científico e Tecnológico em Saúde; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Estudo BENEFIT: Aplicação da PCR na avaliação da eficácia terapêutica do benzonidazol em pacientes chagásicos crônicos; 2009; Orientação de outra natureza; (Apoio Técnico) - Fundação para o Desenvolvimento Científicio e Tecnológico em Saúde, Fundação para o Desenvolvimento Científico e Tecnológico em Saúde; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Estudo BENEFIT - Avaliação da eficácia do benzonidazol no tratamento da cardiopatia chagásica crônica; 2007; Orientação de outra natureza - Fundação Oswaldo Cruz, Mc Master University/ PHRI; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Diagnóstico molecular da doença de Chagas; 2006; Orientação de outra natureza; (Programa de Vocação Científica) - Fundação Oswaldo Cruz; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Avaliação da PCR no diagnóstico da doença de Chagas crônica em diferentes regiões geográficas do Brasil; 2006; Orientação de outra natureza - CEFET de Química; Orientador: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto;
Produções bibliográficas
-
MORELLI, L. C. ; PITA-PEREIRA, D. DE ; BRITTO, C ; PEREIRA, T. A. ; SOUZA, L. A. F. ; GERMANO, K. O. ; ANDRADE, A. J. ; COSTA-RIBEIRO, M. C. V. . Leishmania (Leishmania) infantum DNA detection in Nyssomyia neivai in Vale do Ribeira, Paraná, Brazil. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 119, p. e230173, 2024.
-
VASCONCELOS, S. A. ; SOUSA, R. L. T. ; COSTA JUNIOR, E. ; SOUZA, J. P. D. E. ; CAVALCANTE, D. ; SILVA, A. C. L. ; MENDONCA, I. L. ; MALLET, J. ; TEIXEIRA, C. R. ; WERNECK, G. L. ; ARAUJO-PEREIRA, T. ; PITA-PEREIRA, D. ; BRITTO, C. ; VILELA, M. L. ; GOMES, R. . Characterization of an area of coexistent Visceral and Cutaneous Leishmaniasis transmission in the state of Piauí, Brazil. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 119, p. e230181, 2024.
-
VILAR-PEREIRA, G. ; GIBALDI, D. ; CASTANO-BARRIOS, L. ; SILVA, A. A. ; PEREIRA, I. R. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, CONSTANÇA ; SANTOS, H. A. N. M. ; LOPES, R. O. ; TINOCO, L. W. ; OLIVEIRA JR, W. ; LANNESVIEIRA, J. . The beneficial effect of fluoxetine on behavioral and cognitive changes in chronic experimental Chagas disease unveils the role of serotonin fueling astrocyte infection by Trypanosoma cruzi. PLoS Neglected Tropical Diseases , v. 18, p. e0012199, 2024.
-
SCHIJMAN, A. G. ; ALONSO-PADILLA, J. ; BRITTO, C. ; BERNAL, C. P. H. . Retrospect, advances and challenges in Chagas disease diagnosis: a comprehensive review. Lancet Regional Health-Americas , v. 36, p. 100821, 2024.
-
ARAÚJO-PEREIRA, THAIS ; TAVARES-DOS-REIS, RAFAELA ; BRITTO, CONSTANÇA ; BRAZIL, REGINALDO P. ; D?AVILA, CLAUDIA M. ; ENNES-VIDAL, VÍTOR . hsp70 PCR-RFLP as an alternative tool to identify Sauroleishmania species. PARASITOLOGY RESEARCH , v. 123, p. 260, 2024.
-
PINTO, I. S. ; RODRIGUES, B. L. ; ARAUJO-PEREIRA, T. ; SHIMABUKURO, P. H. F. ; PITA-PEREIRA, D. DE ; CONSTANÇA BRITTO ; BRAZIL, R. P. . DNA barcoding of sand flies (Diptera, Psychodidae, Phlebotominae) from the western Brazilian Amazon. PLoS One , v. 18, p. e0281289, 2023.
-
MARIN-NETO, J. A. ; RASSI JR, A. ; OLIVEIRA, G. M. M. ; CORREIA, L. C. L. ; RAMOS JR, A. N. ; HASSLOCHER-MORENO, A. M. ; OSTERMAYER, A. L. ; SOUSA, A. S. ; PAOLA, A. A. V. ; SOUSA, A. C. S. ; RIBEIRO, A. L. P. ; CORREIA FILHO, D. ; SOUZA, D. S. M. ; CUNHA-NETO, E. ; RAMIRES, F. J. A. ; BACAL, F. ; NUNES, M. C. P. ; MARTINELLI FILHO, M. ; SCANAVACCA, M. I. ; BRITTO, C ; et.al . Diretriz da SBC sobre Diagnóstico e Tratamento de Pacientes com Cardiomiopatia da Doença de Chagas. Arquivos Brasileiros de Cardiologia (eletronic) , v. 120, p. e20230269, 2023.
-
MENDES, V. G. ; RIMOLO, L. ; LIMA, A. C. B. ; FERREIRA, R. R. ; OLIVEIRA, L. S. ; NISIMURA, L. M. ; HORITA, S. I. M. ; COSTA, A. R. ; SILVA, G. M. S. ; SANGENIS, L. H. C. ; MENDES, F. S. N. S. ; SOUSA, A. S. ; VELOSO, H. H. ; HOLANDA, M. T. ; MEDIANO, M. F. F. ; WAGHABI, M. C. ; GARZONI, L. R. ; MOREIRA, O. C. ; CONSTANÇA BRITTO ; CUNHA, A. B. ; et.al . Biomarkers and Echocardiographic Predictors of Cardiovascular Outcome in Patients With Chronic Chagas Disease. Journal of the American Heart Association , v. 12, p. e028810, 2023.
-
MOREIRA, OTACILIO C. ; FERNANDES, ALICE GOMES ; GOMES, NATALIA LINS DA SILVA ; DOS SANTOS, CAROLINA MESSIAS ; JACOMASSO, THIAGO ; COSTA, ALEXANDRE DIAS TAVARES ; NASCIMENTO, LUCAS DE O. ROSSETTI ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO MARCEL ; DO BRASIL, PEDRO EMMANUEL ALVARENGA AMERICANO ; MORELLO, LUIS GUSTAVO ; MARCHINI, FABRICIO KLERYNTON ; KRIEGER, MARCO AURELIO ; BRITTO, CONSTANÇA . Validation of the NAT Chagas IVD Kit for the Detection and Quantification of Trypanosoma cruzi in Blood Samples of Patients with Chagas Disease. Life-Basel , v. 13, p. 1236, 2023.
-
DE SOUSA, RAIMUNDO LEOBERTO TORRES ; ARAUJO-PEREIRA, THAIS DE ; LEAL, ANANGELA RAVENA DA SILVA ; FREIRE, SIMONE MOUSINHO ; SILVA, CLEANTO LUIZ MAIA ; MALLET, JACENIR REIS DOS SANTOS ; VILELA, MAURICIO LUIZ ; VASCONCELOS, SILVIA ALCÂNTARA ; GOMES, RÉGIS ; TEIXEIRA, CLARISSA ; BRITTO, CONSTANÇA ; PITA PEREIRA, DANIELA DE ; CARVALHO, BRUNO MOREIRA DE . Association between the potential distribution of Lutzomyia longipalpis and Nyssomyia whitmani and leishmaniasis incidence in Piauí State, Brazil. PLoS Neglected Tropical Diseases , v. 17, p. e0011388, 2023.
-
FILGUEIRA, CAMILA PATRICIO BRAGA ; PITTA-PEREIRA, DANIELA ; CANTANHÊDE, LILIAN MOTTA ; FERREIRA, GABRIEL EDUARDO MELIM ; DOS REIS, SAYONARA ; Cupolillo, Elisa ; MOREIRA, OTACILIO C. ; BRITTO, CONSTANÇA ; BOITÉ, MARIANA CÔRTES . HRM Accuracy and Limitations as a Species Typing Tool for Leishmania Parasites. INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES , v. 24, p. 14784, 2023.
-
DE LIMA, ANA CAROLINA BASTOS ; MENDES, VERONICA GONÇALVES ; FERREIRA, ROBERTO RODRIGUES ; NISIMURA, LINDICE MITIE ; HORITA, SAMUEL IWAO MAIA ; VELOSO, HENRIQUE H ; COSTA, ANDRÉA R ; DA SILVA, GILBERTO MARCELO S ; SANGENIS, LUIZ HENRIQUE C ; HOLANDA, MARCELO T ; RIMOLO, LORENA ; CUNHA, ADEMIR B ; GARZONI, LUCIANA RIBEIRO ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO MARCEL ; MEDIANO, MAURO FELIPPE F ; MOREIRA, OTACÍLIO DA CRUZ ; BRITTO, CONSTANÇA ; SARAIVA, ROBERTO M . Predictors of Trypanosoma cruzi PCR positivity in patients with chronic Chagas disease. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz , v. 118, p. e230115,, 2023.
-
ALMEIDA, EROS ANTONIO DE ; MENDES, FERNANDA DE SOUZA NOGUEIRA SARDINHA ; RAMOS JÚNIOR, ALBERTO NOVAES ; SOUSA, ANDRÉA SILVESTRE DE ; PAVAN, TYCHA BIANCA SABAINI ; MEDIANO, MAURO FELIPPE FELIX ; OSTERMAYER, ALEJANDRO LUQUETTI ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO MARCEL ; BRITTO, CONSTANÇA FELICIA DE PAOLI DE CARVALHO ; NOVAES, CHRISTINA GALLAFRIO ; CORREIA, DALMO ; SANTOS, FRED LUCIANO NEVES ; SILVA, GILBERTO MARCELO SPERANDIO DA ; FERNANDEZ, MARISA LILIANA ; LIMA, MAYARA MAIA ; CARVALHO, NOÊMIA BARBOSA DE ; MOREIRA, OTACÍLIO DA CRUZ ; ALBAJAR-VIÑAS, PEDRO ; LEITE, RUTH MOREIRA ; PALMEIRA, SWAMY LIMA ; et.al . Guidelines for Trypanosoma cruzi-HIV Co-infection and other Immunosuppressive Conditions: Diagnosis, Treatment, Monitoring, and Implementation from the International Network of Care and Studies - 2023. SOCIEDADE BRASILEIRA DE MEDICINA TROPICAL. REVISTA , v. 56, p. e0549-2023, 2023.
-
BRITTO, C.C. . Revisiting Chagas' disease diagnostic strategies in light of different scenarios of Trypanosoma cruzi infection. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 116, p. e210444chgsb, 2022.
-
VILAR-PEREIRA, GLAUCIA ; CASTAÑO BARRIOS, LEDA ; SILVA, ANDREA ALICE DA ; MARTINS BATISTA, ANGELICA ; RESENDE PEREIRA, ISABELA ; CRUZ MOREIRA, OTACÍLIO ; BRITTO, CONSTANÇA ; MATA DOS SANTOS, HÍLTON ANTÔNIO ; Lannes-Vieira, Joseli . Memory impairment in chronic experimental Chagas disease: Benznidazole therapy reversed cognitive deficit in association with reduction of parasite load and oxidative stress in the nervous tissue. PLoS One , v. 16, p. e0244710, 2021.
-
MUÑOZ-CALDERÓN, ARTURO ; SILVA-GOMESS, NATALIA LINS ; APODACA, SOFIA ; ALARCÓN DE NOYA, BELKISYOLÉ ; DÍAZ-BELLO, ZORAIDA ; QUINTINO SOUZA, LETICIA ROCHA ; TAVARES COSTA, ALEXANDRE DIAS ; BRITTO, CONSTANÇA ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ ; SCHIJMAN, ALEJANDRO GABRIEL . Towards the establishment of a single standard curve for quantification of Trypanosoma cruzi natural populations using a synthetic satellite unit DNA sequence. JOURNAL OF MOLECULAR DIAGNOSTICS , v. 23, p. 521-531, 2021.
-
SARAIVA, ROBERTO MAGALHÃES ; PORTELA, LUCIANA FERNANDES ; SILVEIRA, GABRIEL PARREIRAS ESTOLANO DA ; GOMES, NATALIA LINS DA SILVA ; PINTO, DOUGLAS PEREIRA ; SILVA, ALINE CAMPOS DE AZEVEDO DA ; SANGENIS, LUIZ HENRIQUE CONDE ; CARNEIRO, FERNANDA MARTINS ; ALMEIDA-SILVA, JULIANA ; MARINHO, PATRICIA WINK ; SPERANDIO-SILVA, GILBERTO MARCELO ; ESTRELA, RITA DE CÁSSIA ELIAS ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO MARCEL ; MEDIANO, MAURO FELIPPE FELIX ; MOREIRA, OTACILIO C. ; BRITTO, CONSTANÇA ; PEREZ, SANDRA AURORA CHAVEZ ; VIÇOSA, ALESSANDRA LIFSITCH ; SUAREZ-FONTES, ANA MÁRCIA ; VANNIER-SANTOS, MARCOS ANDRÉ ; et.al . Disulfiram repurposing in the combined chemotherapy of Chagas disease. Medicine: Case Reports and Study Protocols , v. 2, p. e0110, 2021.
-
HOLANDA, MARCELO T. ; MEDIANO, MAURO F.F. ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO M. ; GONZAGA, BEATRIZ M.S. ; CARVALHO, ANNA CRISTINA C. ; FERREIRA, ROBERTO R. ; GARZONI, LUCIANA R. ; PEREIRA-SILVA, FERNANDA S. ; PIMENTEL, LUIS O. ; MENDES, MARCELO O. ; AZEVEDO, MARCOS J. ; BRITTO, CONSTANÇA ; MOREIRA, OTACILIO C. ; FERNANDES, ALICE G. ; SANTOS, CAROLINA M. ; CONSTERMANI, JÉSSICA ; PARAVIDINO, VITOR B. ; MACIEL, ERICA R. ; CARNEIRO, FERNANDA M. ; XAVIER, SÉRGIO S. ; et.al . Effects of Selenium treatment on cardiac function in Chagas heart disease: Results from the STCC randomized Trial. EClinicalMedicine , v. 40, p. 101105, 2021.
-
PROBST, C. M. ; MELO, M. F. A. D. ; PAVONI, D. P. ; TOLEDO, M. J. O. ; GALDINO, T. S. ; BRANDAO, A. A. ; BRITTO, C. ; KRIEGER, M. A. . A new Trypanosoma cruzi genotyping method enables high resolution evolutionary analyses. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 116, p. e200538, 2021.
-
TÁTILA-FERREIRA, ALINE ; GARCIA, GABRIELA A. ; DOS SANTOS, LILHA M. B. ; PAVAN, MÁRCIO G. ; DE C. MOREIRA, CARLOS JOSÉ ; VICTORIANO, JULIANA C. ; DA SILVA-JUNIOR, RENATO ; DOS SANTOS-MALLET, JACENIR R. ; VERLY, THAIANE ; BRITTO, CONSTANÇA ; SIKULU-LORD, MAGGY T. ; MACIEL-DE-FREITAS, RAFAEL . Near infrared spectroscopy accurately detects Trypanosoma cruzi non-destructively in midguts, rectum and excreta samples of Triatoma infestans. Scientific Reports , v. 11, p. 23884, 2021.
-
SANTOS, J. P. ; SILVA JUNIOR, R. ; HELENA, A. ; VERLY, T. S. ; BRITTO, C ; EVANGELISTA, B. B. C. ; SILVA, L. R. ; SILVA, D. F. M. ; OLIVEIRA, R. A. ; PEREIRA, E. ; MONTEIRO, K. J. L. ; CARVALHO-COSTA, F. A. ; MALLET, J. R. S. . Assessing the entomo-epidemiological situation of Chagas disease in rural communities in the state of Piauí, Brazilian semi-arid region. TRANSACTIONS OF THE ROYAL SOCIETY OF TROPICAL MEDICINE AND HYGIENE , v. 114, p. 1-10, 2020.
-
VERLY, T. S. ; COSTA, S. ; LIMA, N. ; MALLET, J. R. S. ; ODENCIO, F. ; PEREIRA, M. ; MOREIRA, C. J. C. ; BRITTO, CONSTANÇA ; PAVAN, M. G. . Vector competence and feeding-excretion behavior of Triatoma rubrovaria (Blanchard, 1843) (Hemiptera: Reduviidae) infected with Trypanosoma cruzi TcVI. PLoS Neglected Tropical Diseases , v. 14, p. e0008712, 2020.
-
TUCCI, AMANDA R. ; OLIVEIRA, FRANCISCO O. R. DE ; LECHUGA, GUILHERME C. ; OLIVEIRA, GABRIEL M. ; ELEUTERIO, ANA CAROLINA ; MESQUITA, LILIANE B. DE ; FARANI, PRISCILA S.G. ; BRITTO, CONSTANÇA ; MOREIRA, OTACÍLIO C. ; PEREIRA, MIRIAN CLAUDIA S. . Role of FAK signaling in chagasic cardiac hypertrophy. Brazilian Journal of Infectious Diseases , v. 24, p. 386-397, 2020.
-
ENNES-VIDAL, V. ; PITALUGA, A. N. ; BRITTO, CONSTANÇA ; BRANQUINHA, M. H. ; SANTOS, A. L. S. ; MENNA-BARRETO, R. F. S. ; D?AVILA-LEVY, C. M. . Expression and cellular localisation of Trypanosoma cruzi calpains. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 115, p. e200142, 2020.
-
ARAUJO-PEREIRA, T. ; PITA-PEREIRA, D. ; BAIA-GOMES, S. M. ; BOITE, M. ; SILVA, F. ; PINTO, I. S. ; SOUSA, R. L. T. ; FUZARI, A. A. ; SOUZA, C. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, CONSTANÇA . An overview of the sand fly fauna (Diptera: Psychodidae) followed by the detection of Leishmania DNA and blood meal identification in the State of Acre, Amazonian Brazil. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 115, p. e200157, 2020.
-
FILGUEIRA, C. P. B. ; MOREIRA, O. ; CANTANHEDE, L. M. ; FARIAS, H. M. T. ; PORROZZI, R. ; CONSTANÇA BRITTO ; BOITE, M. C. ; CUPOLILLO, E. . Comparison and clinical validation of qPCR assays targeting Leishmania 18S rDNA and HSP70 genes in patients with American Tegumentary Leishmaniasis. PLoS Neglected Tropical Diseases , v. 14, p. e0008750, 2020.
-
NIELEBOCK, MARCO ANTONIO PRATES ; MOREIRA, OTACÍLIO C. ; XAVIER, SAMANTA CRISTINA DAS CHAGAS ; MIRANDA, LUCIANA DE FREITAS CAMPOS ; LIMA, ANA CAROLINA BASTOS DE ; PEREIRA, THAYANNE OLIVEIRA DE JESUS SALES ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO MARCEL ; BRITTO, CONSTANÇA ; SANGENIS, LUIZ HENRIQUE CONDE ; SARAIVA, ROBERTO MAGALHÃES . Association between Trypanosoma cruzi DTU TcII and chronic Chagas disease clinical presentation and outcome in an urban cohort in Brazil. PLoS One , v. 15, p. e0243008, 2020.
-
GUEDES DA SILVA, FRANCISCA HILDEMAGNA ; BATISTA, DENISE DA GAMA JAÉN ; da Silva, Cristiane França ; PAVÃO, BEATRIZ PHILOT ; Batista, Marcos Meuser ; MOREIRA, OTACÍLIO DA CRUZ ; SOUZA, LETÍCIA ROCHA Q. ; BRITTO, CONSTANÇA ; RACHAKONDA, GIRISH ; VILLALTA, FERNANDO ; LEPESHEVA, GALINA I ; SOEIRO, MARIA DE NAZARÉ CORREIA . Successful Aspects of the Co-administration of Sterol 14α-Demethylase Inhibitor VFV and Benznidazole in Experimental Mouse Models of Chagas Disease Caused by the Drug-Resistant Strain of Trypanosoma cruzi. ACS Infectious Diseases , v. 5, p. 365-371, 2019.
-
REBELLO, K. M. ; UEHARA, L. A. ; ENNES-VIDAL, V. ; GARCIA-GOMES, A. S. ; BRITTO, CONSTANÇA ; AZAMBUJA, P. ; MENNA-BARRETO, R. F. S. ; SANTOS, A. L. S. ; BRANQUINHA, M. H. ; D'Avila-Levy CM . Participation of Trypanosoma cruzi gp63 molecules on the interaction with Rhodnius prolixus. PARASITOLOGY , p. 1-8, 2019.
-
BATISTA, D. G. ; BRITTO, C ; MONTES, G. L. S. ; BACCARO, F. B. . Occurrence of triatomines (Hemiptera: Reduviidae) in domestic and natural environments in Novo Remanso, Itacoatiara, AM. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical , v. 52, p. e20190063, 2019.
-
ROCHA SIMÕES-SILVA, MARIANNE ; BRANDÃO PERES, RAIZA ; BRITTO, CONSTANÇA ; MACHADO CASCABULHO, CYNTHIA ; DE MELO OLIVEIRA, GABRIEL ; NEFERTITI DA GAMA, ALINE ; FRANÇA DA SILVA, CRISTIANE ; LIMA DA COSTA, KARINE ; FINAMORE ARAÚJO, PAULA ; DIEGO DE SOUZA CAMPOS, JERÔNIMO ; Meuser Batista, Marcos ; CRISTINA DEMARQUE, KELLY ; DA CRUZ MOREIRA, OTACÍLIO ; de Nazaré Correia Soeiro, Maria . Impact of levamisole in co-administration with benznidazole on experimental Chagas disease. PARASITOLOGY , v. 144, p. 1-8, 2019.
-
RAMPAZZO, RITA C.P. ; GRAZIANI, ANA C. ; LEITE, KEREN K. ; SURDI, JHULLY A. ; BIONDO, CHEYSA A. ; COSTA, MAYKON L.N. ; JACOMASSO, THIAGO ; CEREDA, MARCO ; DE FAZIO, MARCO ; BIANCHESSI, MARCO A. ; MOREIRA, OTACÍLIO C. ; BRITTO, CONSTANÇA ; COSTA, JOANA D.N. ; GÓES, VIVIANE M. ; DA SILVA, ALEXANDRE J. ; KRIEGER, MARCO A. ; COSTA, ALEXANDRE D.T. . Proof of concept for a portable platform for molecular diagnosis of tropical diseases: On-chip ready-to-use qPCR for detection of Trypanosoma cruzi or Plasmodium spp. JOURNAL OF MOLECULAR DIAGNOSTICS , v. S1525, p. 30549-30559, 2019.
-
SANTOS, T. V. ; PITA-PEREIRA, D. ; ARAUJO-PEREIRA, T. ; BRITTO, C ; SILVEIRA, F. T. ; POVOA, M. M. ; Rangel, EF . Leishmania DNA detection and species characterization within phlebotomines (Diptera: Psychodidae) from a peridomicile-forest gradient in an Amazonian/Guianan bordering area. PLoS One , v. 14, p. e0219626, 2019.
-
ARAUJO-PEREIRA, T. ; PITA-PEREIRA, D. ; MOREIRA, R. B. ; Silva-Galdino T ; DUARTE, M. O. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, CONSTANÇA . Molecular Diagnosis of Cutaneous Leishmaniasis in an Endemic Area of Acre State in the Amazonian Region of Brazil. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical , v. 51, p. 376-381, 2018.
-
FERREIRA, R. T. B. ; CABRAL, M. L. ; MARTINS, R. S. ; ARAUJO, P. F. ; SILVA, S. A. ; BRITTO, C ; BRANQUINHO, M. R. ; CARDARELLI-LEITE, P. ; MOREIRA, O. C. . Detection and genotyping of Trypanosoma cruzi from açai products commercialized in Rio de Janeiro and Pará, Brazil. Parasites & Vectors , v. 11, p. 233, 2018.
-
DIAS-LOPES, GEOVANE ; WI'NIEWSKI, JACEK R. ; DE SOUZA, NATHALIA PINHO ; VIDAL, VÍTOR ENNES ; PALOMARES, GABRIEL PADRON ; BRITTO, CONSTANÇA ; Cuervo, Patricia ; DE JESUS, JOSÉ BATISTA . In-depth quantitative proteomic analysis of trophozoites and pseudocysts of Trichomonas vaginalis. JOURNAL OF PROTEOME RESEARCH , v. 10, p. e000156, 2018.
-
RODRIGUES-DOS-SANTOS, ÍCARO ; MELO, MYLLENA F. ; DE CASTRO, LIANE ; HASSLOCHER-MORENO, ALEJANDRO MARCEL ; DO BRASIL, PEDRO EMMANUEL A. A. ; SILVESTRE DE SOUSA, ANDRÉA ; BRITTO, CONSTANÇA ; MOREIRA, OTACILIO C. . Exploring the parasite load and molecular diversity of Trypanosoma cruzi in patients with chronic Chagas disease from different regions of Brazil. PLoS Neglected Tropical Diseases , v. 12, p. e0006939, 2018.
-
D?ÁVILA, DANIELLA ALCHAAR ; GALVÃO, LÚCIA MARIA C. ; SOUSA, GIOVANE R. ; BRITTO, CONSTANÇA ; MOREIRA, OTACILIO C. ; CHIARI, EGLER . Monitoring the parasite load in chronic Chagas disease patients: comparison between blood culture and quantitative real time PCR. PLoS One , v. 13, p. e0208133, 2018.
-
ARAUJO-PEREIRA, T. ; PITA-PEREIRA, D. ; BOITE, M. C. ; MELO, M. ; COSTA-REGO, T. A. ; FUZARI, A. A. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, C . First description of Leishmania (Viannia) infection in Evandromyia saulensis, Pressatia sp. and Trichophoromyia auraensis (Psychodidae: Phlebotominae) in a transmission area of cutaneous leishmaniasis in Acre state, Amazon Basin, Brazil. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz (Online) , v. 112, p. 75-78, 2017.
-
GUEDES-DA-SILVA, F. ; BATISTA, D. G. J. ; SILVA, C. F. ; ARAUJO, J. ; PAVAO, B. ; SIMOES-SILVA, M. ; BATISTA, M. ; DEMARQUE, K. ; MOREIRA, O. ; BRITTO, CONSTANCA ; LEPESHEVA, G. ; SOEIRO, M. N. . Antitrypanosomal Activity of Sterol 14α-Demethylase (CYP51) Inhibitors VNI and VFV in the Swiss Mouse Models of Chagas Disease Induced by the Trypanosoma cruzi Y Strain. ANTIMICROBIAL AGENTS AND CHEMOTHERAPY , v. 61, p. e02098-16, 2017.
-
SILVA-DOS-SANTOS, DANIELLE ; BARRETO-DE-ALBUQUERQUE, JULIANA ; GUERRA, BÁRBARA ; MOREIRA, OTACILIO C. ; BERBERT, LUIZ RICARDO ; RAMOS, MARIANA TAVARES ; MASCARENHAS, BARBARA ANGELICA S. ; BRITTO, CONSTANÇA ; MORROT, ALEXANDRE ; SERRA VILLA-VERDE, DÉA M. ; GARZONI, LUCIANA RIBEIRO ; SAVINO, WILSON ; COTTA-DE-ALMEIDA, VINÍCIUS ; MEIS, JULIANA DE . Unraveling Chagas disease transmission through the oral route: Gateways to Trypanosoma cruzi infection and target tissues. PLoS Neglected Tropical Diseases (Online) , v. 11, p. e0005507, 2017.
-
DIAS-LOPES, G. ; SABOIA-VAHIA, L. ; MARGOTTI, E. T. ; FERNANDES, N. S. ; CASTRO, C. L. F. ; OLIVEIRA-JUNIOR, F. O. ; PEIXOTO, J. F. ; Britto, Constança ; SILVA-FILHO, F. C. E. ; CUERVO, P. ; JESUS, J. B. . Morphologic study of the effect of iron on pseudocyst formation in Trichomonas vaginalis and interaction with human epithelial cells. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 112, p. 664-673, 2017.
-
ARAUJO-PEREIRA, T. ; PITA-PEREIRA, D. ; BOITE, M. C. ; MELO, M. ; COSTA-REGO, T. A. ; FUZARI, A. A. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, CONSTANÇA . Comments about the finding of Trichophoromyia auraensis (Mangabeira 1942) sandfly specimens infected by Leishmania (Viannia) parasites in Acre state (REPLY). MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 112, p. 517-519, 2017.
-
PEREIRA, S. M. F. ; PITA-PEREIRA, D. ; ARAUJO-PEREIRA, T. ; BRITTO, C. ; COSTA-REGO, T. A. ; FERROLHO, J. I. F. ; VILHENA, M. ; Rangel, EF ; VILELA, M. L. ; AFONSO, O. . First molecular detection of Leishmania infantum in Sergentomyia minuta (Diptera, Psychodidae) in Alentejo, southern Portugal. ACTA TROPICA , v. 174, p. 45-48, 2017.
-
MOREIRA, OTACILIO C. ; VERLY, THAIANE ; FINAMORE-ARAUJO, PAULA ; GOMES, SUZETE A. O. ; LOPES, CATARINA M. ; DE SOUSA, DANIELLE M. ; AZEVEDO, LÍVIA R. ; DA MOTA, FABIO F. ; D?AVILA-LEVY, CLAUDIA M. ; SANTOS-MALLET, JACENIR R. ; BRITTO, CONSTANÇA . Development of conventional and real-time multiplex PCR-based assays for estimation of natural infection rates and Trypanosoma cruzi load in triatomine vectors. Parasites & Vectors , v. 10, p. 404, 2017.
-
DIAS-LOPES, GEOVANE ; Borges-Veloso, Andre ; Saboia-Vahia, Leonardo ; PADRÓN, GABRIEL ; DE FARIA CASTRO, CÁSSIA LUANA ; GUIMARÃES, ANA CAROLINA RAMOS ; BRITTO, CONSTANÇA ; Cuervo, Patricia ; De Jesus, Jose Batista . Proteomics reveals major components of oogenesis in the reproductive tract of sugar-fed Anopheles aquasalis. Parasitology Research (1987. Print) , v. 115, p. 1977-1989, 2016.
-
GUEDES-DA-SILVA, F. H. ; BATISTA, D. G. J. ; MEUSER, M. B. ; FULCO, T. O. ; ARAÚJO, J. S. ; DA SILVA, P. B. ; DA SILVA, C. F. ; PATRICK, D. A. ; BAKUNOVA, S. M. ; BAKUNOV, A. S. ; TIDWELL, R. R. ; OLIVEIRA, G. M. ; BRITTO, C ; MOREIRA, O. C. ; SOEIRO, M. N. C. . In vitro and In vivo Trypanosomicidal Action of Novel Arylimidamides Against Trypanosoma cruzi. Antimicrobial Agents and Chemotherapy (Print) , v. 60, p. AAC.01667-15-2434, 2016.
-
CASTRO, CÁSSIA ; MENNA-BARRETO, RUBEM FIGUEIREDO SADOK ; FERNANDES, NILMA DE SOUZA ; Saboia-Vahia, Leonardo ; DIAS-LOPES, GEOVANE ; BRITTO, CONSTANÇA ; Cuervo, Patricia ; DE JESUS, JOSÉ BATISTA . Iron-modulated pseudocyst formation in Tritrichomonas foetus. Parasitology (London. Print) , v. 143, p. 1034-1042, 2016.
-
VILAR-PEREIRA, GLAUCIA ; Pereira, Isabela Resende ; RUIVO, LEONARDO ALEXANDRE DE SOUZA ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ ; da Silva, Andrea Alice ; BRITTO, CONSTANÇA ; Lannes-Vieira, Joseli . Combination of Chemotherapy with Suboptimal dose of Benznidazole and Pentoxifylline Sustained the Partial Reversion of Experimental Chagas' Heart Disease. Antimicrobial Agents and Chemotherapy (Print) , v. 60, p. AAC.02123-15-4309, 2016.
-
CARLOS PINTO DIAS, JOÃO ; NOVAES RAMOS, ALBERTO ; DIAS GONTIJO, ELIANE ; LUQUETTI, ALEJANDRO ; APARECIDA SHIKANAI-YASUDA, MARIA ; RODRIGUES COURA, JOSÉ ; MORAIS TORRES, ROSÁLIA ; RENAN DA CUNHA MELO, JOSÉ ; ANTONIO DE ALMEIDA, EROS ; DE OLIVEIRA JR, WILSON ; CARLOS SILVEIRA, ANTÔNIO ; MARCONDES DE REZENDE, JOFFRE ; SCALABRINI PINTO, FABIANE ; WALTER FERREIRA, ANTONIO ; RASSI, ANIS ; AUGUSTO FRAGATA FILHO, ABÍLIO ; SILVESTRE DE SOUSA, ANDRÉA ; CORREIA FILHO, DALMO ; MARIA JANSEN, ANA ; BRITTO, C ; et.al . II Consenso Brasileiro em Doença de Chagas, 2015. Epidemiologia e Servicos de Saude , v. 25, p. 1-10, 2016.
-
FERNANDES-MONTEIRO, A. G. ; TRINDADE, G. F. ; YAMAMURA, A. M. Y. ; MOREIRA, O. C. ; PAULA, V. S. ; DUARTE, A. C. M. ; BRITTO, C. ; LIMA, S. M. B. . New approaches for the standardization and validation of a Real-Time qPCR assay using TaqMan probes for quantification of yellow fever virus on clinical samples with high quality parameters. Human Vaccines & Immunotherapeutics , v. 11, p. 1865-1871, 2015.
-
MELO, MYLLENA F ; Moreira, Otacilio C ; TENÓRIO, PRISCILA ; LORENA, VIRGINIA ; LORENA-REZENDE, IZAURA ; JÚNIOR, WILSON OLIVEIRA ; GOMES, YARA ; BRITTO, CONSTANÇA . Usefulness of real time PCR to quantify parasite load in serum samples from chronic Chagas disease patients. Parasites & Vectors , v. 8, p. 154, 2015.
-
Pereira, Isabela Resende ; VILAR-PEREIRA, GLAUCIA ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ ; RAMOS, ISALIRA PEROBA ; GIBALDI, DANIEL ; BRITTO, CONSTANÇA ; Moraes, Milton Ozório ; Lannes-Vieira, Joseli . Pentoxifylline Reverses Chronic Experimental Chagasic Cardiomyopathy in Association with Repositioning of Abnormal CD8+ T-Cell Response. PLoS Neglected Tropical Diseases (Online) , v. 9, p. e0003659, 2015.
-
PORRAS, A. I. ; YADON, Z. E. ; ALTCHEH, J. ; BRITTO, C ; CHAVES, G. C. ; FLEVAUD, L. ; MARTINS-FILHO, O. ; RIBEIRO, I. ; SCHIJMAN, A. ; SHIKANAI-YASUDA, M. A. ; SOSA-ESTANI, S. ; STOBBAERTS, E. ; ZICKER, F. . Target Product Profile (TPP) for Chagas Disease Point-of-Care Diagnosis and Assessment of Response to Treatment. PLoS Neglected Tropical Diseases (Online) , v. 9, p. e0003697, 2015.
-
RAMIREZ, J. C. ; CURA, C. I. ; MOREIRA, O. C. ; LAGES-SILVA, E. ; JUIZ, N. ; VELAZQUEZ, E. ; RAMIREZ, J. D. ; ALBERTI, A. ; PAVIA, P. ; FLORES-CHAVEZ, M. D. ; MUNOZ-CALDERON, A. ; et al. ; DIOSQUE, P. ; SOSA-ESTANI, S. ; GUHL, F. ; RIBEIRO, I. ; AZNAR, C. ; BRITTO, C. ; YADON, Z. E. ; SCHIJMAN, A. G. ; et.al . Analytical validation of qPCR methods for quantification of Trypanosoma cruzi DNA in blood samples from Chagas disease patients. JOURNAL OF MOLECULAR DIAGNOSTICS , v. 17, p. 605-615, 2015.
-
HAMEDI, AFSANEH ; BOTELHO, LARISSE ; BRITTO, CONSTANÇA ; FRAGOSO, STENIO PERDIGÃO ; UMAKI, ADRIANA CASTILHOS SOUZA ; GOLDENBERG, SAMUEL ; BOTTU, GUY ; SALMON, DIDIER . In vitro metacyclogenesis of Trypanosoma cruzi induced by starvation correlates with a transient adenylyl cyclase stimulation as well as with a constitutive upregulation of adenylyl cyclase expression. Molecular and Biochemical Parasitology (Print) , v. 200, p. 9-18, 2015.
-
CHANTRE-JUSTINO, M. ; ALVES, G. ; BRITTO, C. ; CARDOSO, M. A. ; SCHERRER, L. ; MOREIRA, A. S. ; QUIRINO, R. ; ORNELLAS, A. ; LEITAO, A. ; LAGE, C. . Impact of reduced levels of APE1 transcripts on the survival of patients with urothelial carcinoma of the bladder. International Journal of Oncology , v. 34, p. 1667-1674, 2015.
-
BORGES-VELOSO, ANDRÉ ; Saboia-Vahia, Leonardo ; DIAS-LOPES, GEOVANE ; DOMONT, GILBERTO B. ; BRITTO, CONSTANÇA ; Cuervo, Patricia ; DE JESUS, JOSE B. . In-depth characterization of trypsin-like serine peptidases in the midgut of the sugar fed Culex quinquefasciatus. Parasites & Vectors , v. 8, p. 373, 2015.
-
DIAS-LOPES, GEOVANE ; Borges-Veloso, Andre ; Saboia-Vahia, Leonardo ; DOMONT, GILBERTO B. ; BRITTO, CONSTANÇA ; Cuervo, Patricia ; De Jesus, Jose Batista . Expression of active trypsin-like serine peptidases in the midgut of sugar-feeding female Anopheles aquasalis. Parasites & Vectors , v. 8, p. 296, 2015.
-
MORILLO, CARLOS A. ; MARIN-NETO, JOSE ANTONIO ; AVEZUM, ALVARO ; SOSA-ESTANI, SERGIO ; ROSAS, FERNANDO ; VILLENA, ERICK ; QUIROZ, ROBERTO ; BONILLA, RINA ; BRITTO, CONSTANÇA ; Guhl, Felipe ; Velazquez, Elsa ; BONILLA, LAURA ; MEEKS, BRANDI ; RAO-MELACINI, PURNIMA ; POGUE, JANICE ; MATTOS, ANTONIO ; LAZDINS, JANIS ; RASSI, ANIS ; CONNOLLY, STUART J. ; et.al . Randomized Trial of Benznidazole for Chronic Chagas? Cardiomyopathy. NEW ENGLAND JOURNAL OF MEDICINE , v. XX, p. 150901000122008, 2015.
-
GUEDES-DA-SILVA, F. H. ; BATISTA, D. G. J. ; FRANÇA, C. F. ; MEUSER, M. B. ; SIMÕES, M. R. S. ; ARAÚJO, J. S. ; FERREIRA, C. G. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C ; LEPESHEVA, G.I ; SOEIRO, MARIA DE NAZARÉ C. . Different therapeutic outcomes of benznidazole and VNI treatment in distinct genders of mouse experimental models of Trypanosoma cruzi infection. Antimicrobial Agents and Chemotherapy (Print) , v. 59, p. AAC.01294-15-7570, 2015.
-
SILVA GALDINO, TAINAH ; MENNA-BARRETO, RUBEM FIGUEIREDO SADOK ; BRITTO, CONSTANÇA ; SAMUDIO, FRANKLYN ; BRANDÃO, ADEILTON ; KALUME, DÁRIO ELUAN . Cell disruption using a different methodology for proteomics analysis of Trypanosoma cruzi strains. Analytical Biochemistry (Print) , v. 448, p. 1-8, 2014.
-
Saboia-Vahia, Leonardo ; Cuervo, Patricia ; Borges-Veloso, Andre ; DE SOUZA, NATHÁLIA PINHO ; BRITTO, CONSTANÇA ; DIAS-LOPES, GEOVANE ; De Jesus, Jose Batista . The midgut of Aedes albopictus females expresses active trypsin-like serine peptidases. Parasites & Vectors , v. 7, p. 253, 2014.
-
Pereira, Isabela Resende ; VILAR-PEREIRA, GLAUCIA ; SILVA, ANDREA ALICE ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ ; BRITTO, CONSTANÇA ; SARMENTO, ELLEN DIANA MARINHO ; Lannes-Vieira, Joseli . Tumor Necrosis Factor Is a Therapeutic Target for Immunological Unbalance and Cardiac Abnormalities in Chronic Experimental Chagas? Heart Disease. Mediators of Inflammation (Print) , v. 2014, p. 1-16, 2014.
-
Araujo-Pereira T ; RODRIGUES, A. F. ; ANDRADE FILHO, J. D. ; PITA-PEREIRA, D. DE ; BRITTO, C. ; BRAZIL, R. P. . Sand fly fauna (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae) in an area of leishmaniasis transmission in the municipality of Rio Branco, state of Acre, Brazil. Parasites & Vectors , v. 7, p. 360, 2014.
-
CUBA, MARÍLIA BEATRIZ DE ; RIBEIRO MACHADO, MARCUS PAULO ; FARNESI, THAIS SOARES ; ALVES, ANGELICA CRISTINA ; MARTINS, LIVIA ALVES ; OLIVEIRA, LUCAS FELIPE DE ; CAPITELLI, CAROLINE SANTOS ; LEITE, CAMILA FERREIRA ; VINÍCIUS SILVA, MARCOS ; MACHADO, JULIANA REIS ; KAPPEL, HENRIQUE BORGES ; SALES DE CAMPOS, HELIOSWILTON ; PAIVA, LUCIANO ; DA SILVA GOMES, NATÁLIA LINS ; GUIMARÃES FALEIROS, ANA CAROLINA ; CARVALHO BRITTO, CONSTANÇA FELICIA DE PAOLI DE ; SAVINO, WILSON ; Moreira, Otacílio Cruz ; RODRIGUES JR., VIRMONDES ; MONTANO, NICOLA ; et.al . Effects of Cholinergic Stimulation with Pyridostigmine Bromide on Chronic Chagasic Cardiomyopathic Mice. Mediators of Inflammation (Print) , v. 2014, p. 1-13, 2014.
-
BRASIL, P. E. A. A. ; SOUZA, A. P. ; HASSLOCHER-MORENO, A. M. ; XAVIER, S. S. ; PASSOS, S. R. L. ; MOREIRA, M. F. R. ; OLIVEIRA, M. S. ; SILVA, G. M. S. ; SARAIVA, R. M. ; CARDOSO, C. S. A. ; SOUSA, A. S. ; MEDIANO, M. F. F. ; ALMEIDA, M. G. B. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C ; ARAUJO-JORGE, T. C. . Selenium Treatment and Chagasic Cardiopathy (STCC): study protocol for a double-blind randomized controlled trial. Trials (London) , v. 15, p. 388, 2014.
-
MOREIRA, O. C. ; RAMIREZ, J. D. ; VELAZQUEZ, E. ; MELO, M. F. A. D. ; FERREIRA, C. L. ; GUHL, F. ; SOSA-ESTANI, S. ; MARIN-NETO, J. A. ; MORILLO, C. ; BRITTO, C . Towards the establishment of a consensus real-time qPCR to monitor Trypanosoma cruzi parasitemia in patients with chronic Chagas disease cardiomyopathy: A substudy from the BENEFIT trial. Acta Tropica , v. 125, p. 23-31, 2013.
-
Felicio, D L F ; da Silva, R.I. ; VIDAL, L. S. ; Von KRUGER, W. A. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; CARDOSO, J. S. ; LEITAO, A. C. ; LAGE, C. . Overexpression of Escherichia coli nucleotide excision repair genes after cisplatin-induced damage. DNA Repair (Print) , v. 12, p. 63-72, 2013.
-
VILELA, M. L. ; Pita-Pereira, Daniela ; AZEVEDO, C. G. ; GODOY, R. E. ; BRITTO, C ; Rangel, Elizabeth F. . The phlebotomine fauna (Diptera: Psychodidae) of Guaraí, state of Tocantins, with an emphasis on the putative vectors of American cutaneous leishmaniasis in rural settlement and periurban areas. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz (Impresso) , p. 578-585, 2013.
-
SOEIRO, M. N. ; SOUZA, E. ; SILVA, C. ; BATISTA, D. G. J. ; BATISTA, M. M. ; PAVAO, B. ; ARAUJO, J. S. ; AIUB, C. A. ; SILVA, P. B. ; LIONEL, J. ; BRITTO, C. ; KIM, K. ; SULIKOWSKI, G. ; HARGROVE, T. ; WATERMAN, M. ; LEPESHEVA, G. . Antiparasitic Activity of Sterol 14 -Demethylase (CYP51) Inhibitor VNI against Drug-Resistant Strains of Trypanosoma cruzi: In vitro and In vivo Studies. Antimicrobial Agents and Chemotherapy (Print) , v. 57, p. 4151-4163, 2013.
-
Saboia-Vahia, Leonardo ; BORGES-VELOSO, ANDRÉ ; MESQUITA-RODRIGUES, CAMILA ; Cuervo, Patricia ; DIAS-LOPES, GEOVANE ; BRITTO, CONSTANÇA ; DE BARROS SILVA, ANA PAULA ; De Jesus, Jose B . Trypsin-like serine peptidase profiles in the egg, larval, and pupal stages of Aedes albopictus. Parasites & Vectors , v. 6, p. 50, 2013.
-
Lima, Marli M. ; Sarquis, Otília ; Oliveira, Tiago Guedes de ; Gomes, Taís F. ; Coutinho, Carolina ; Daflon-Teixeira, Natália F. ; Toma, Helena K. ; BRITTO, C ; Teixeira, Bernardo R. ; D¿Andrea, Paulo S. ; Jansen, Ana M. ; Bóia, Marcio N. ; Carvalho-Costa, Filipe A. . Investigation of Chagas disease in four periurban areas in northeastern Brazil: epidemiologic survey in man, vectors, non-human hosts and reservoirs. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene , v. 106, p. 143-149, 2012.
-
da Silva, Cristiane França ; Batista, Denise da Gama Jaen ; Oliveira, Gabriel Melo ; de Souza, Elen Mello ; Hammer, Erica Ripoll ; da Silva, Patricia Bernardino ; Daliry, Anissa ; Araujo, Julianna Siciliano ; BRITTO, C ; Rodrigues, Ana Carolina Mondaine ; Liu, Zongying ; Farahat, Abdelbasset A. ; Kumar, Arvind ; Boykin, David W. ; de Nazaré Correia Soeiro, Maria . In Vitro and In Vivo Investigation of the Efficacy of Arylimidamide DB1831 and Its Mesylated Salt Form - DB1965 - against Trypanosoma cruzi Infection. Plos One , v. 7, p. e30356, 2012.
-
Pereira, Bernardo Acácio Santini ; Britto, Constança ; Alves, Carlos Roberto . Expression of infection-related genes in parasites and host during murine experimental infection with Leishmania (Leishmania) amazonensis. Microbial Pathogenesis , v. 52, p. 101-108, 2012.
-
Pita-Pereira, Daniela ; Lins, Rachel ; Oliveira, Marcia P ; Lima, Rosimar B ; Pereira, Bernardo AS ; Moreira, Otacilio C ; Brazil, Reginaldo P ; Britto, Constança . SYBR Green-based Real-Time PCR targeting kinetoplast DNA can be used to discriminate between the main etiologic agents of Brazilian cutaneous and visceral leishmaniases. Parasites & Vectors , v. 5, p. 15, 2012.
-
Carvalho, Cristiano Marcelo Espinola ; Silverio, Jaline Coutinho ; da Silva, Andrea Alice ; Pereira, Isabela Resende ; Coelho, Janice Mery Chicarino ; BRITTO, CC ; Moreira, Otacílio Cruz ; Marchevsky, Renato Sergio ; Xavier, Sergio Salles ; Gazzinelli, Ricardo Tostes ; da Glória Bonecini-Almeida, Maria ; Lannes-Vieira, Joseli . Inducible Nitric Oxide Synthase in Heart Tissue and Nitric Oxide in Serum of Trypanosoma cruzi-Infected Rhesus Monkeys: Association with Heart Injury. Plos Neglected Tropical Diseases , v. 6, p. e1644, 2012.
-
Borges-Veloso, Andre ; Cuervo, Patricia ; Saboia-Vahia, Leonardo ; Pires, Renata C ; BRITTO, C ; Fernandes, Nilma ; d´Avila-Levy, Claudia M ; De Jesus, Jose B . Proteolytic profiling and comparative analyses of active trypsin-like serine peptidases in preimaginal stages of Culex quinquefasciatus. Parasites & Vectors , v. 5, p. 123, 2012.
-
RANGEL, L. P. ; MOREIRA, O. C. ; LIVRAMENTO, G. N. ; BRITTO, C ; ALVIANO, DS ; ALVIANO, CS ; FERREIRA-PEREIRA, A. . Putative Role of an ABC Transporter on Fonsecaea pedrosoi Multidrug Resistance. International Journal of Antimicrobial Agents (Print) , v. 40, p. 409-415, 2012.
-
UEHARA, L. A. ; Moreira, Otacílio Cruz ; Oliveira, A C ; AZAMBUJA, P. ; LIMA, A. P. C. ; BRITTO, C ; SANTOS, A. L. S. ; BRANQUINHA, M. H. ; D'Avila-Levy CM . Cruzipain Promotes Trypanosoma cruzi Adhesion to Rhodnius prolixus Midgut. PLoS Neglected Tropical Diseases (Online) , v. 6, p. e1958, 2012.
-
Saboia-Vahia, Leonardo ; Borges-Veloso, Andre ; Cuervo, Patricia ; JUNQUEIRA, MAGNO ; MESQUITA-RODRIGUES, CAMILA ; BRITTO, CONSTANCA ; DOMONT, GILBERTO BARBOSA ; De Jesus, Jose Batista . Protein expression in the midgut of sugar-fed Aedes albopictus females. Parasites & Vectors , v. 5, p. 290, 2012.
-
BRITTO, C ; Schijman, Alejandro G. ; Bisio, Margarita ; Orellana, Liliana ; Sued, Mariela ; Duffy, Tomás ; Mejia Jaramillo, Ana M. ; Cura, Carolina ; Auter, Frederic ; Veron, Vincent ; Qvarnstrom, Yvonne ; Deborggraeve, Stijn ; Hijar, Gisely ; Zulantay, Inés ; Lucero, Raúl Horacio ; Velazquez, Elsa ; Tellez, Tatiana ; Sanchez Leon, Zunilda ; Galvão, Lucia ; Nolder, Debbie ; et.al . International Study to Evaluate PCR Methods for Detection of Trypanosoma cruzi DNA in Blood Samples from Chagas Disease Patients. PLoS Neglected Tropical Diseases , v. 5, p. e931, 2011.
-
VIDAL, V. E. ; CASTRO, R. O. S. ; BRITTO, C ; BARRABIN, H. ; D'Avila-Levy CM ; MOREIRA, O. C. . CrATP interferes in the promastigote-macrophage interaction in Leishmania amazonensis infection. Parasitology (London. Print) , p. 1-9, 2011.
-
Meuser-Batista, Marcelo ; Corrêa, José Raimundo ; Carvalho, Vinícius Frias ; BRITTO, C ; da Cruz Moreira, Otacilio ; Batista, Marcos Meuser ; Soares, Maurílio José ; Filho, Francisco Alves Farias ; e Silva, Patrícia Machado R. ; Lannes-Vieira, Joseli ; Silva, Robson Coutinho ; Henriques-Pons, Andrea . Mast Cell Function and Death in Trypanosoma cruzi Infection. The American Journal of Pathology (Print) , v. 179, p. 1894-1904, 2011.
-
Pita-Pereira, Daniela de ; Souza, Getúlio D. ; Pereira, Thaís de Araújo ; Zwetsch, Adriana ; Britto, Constança ; Rangel, Elizabeth F. . Lutzomyia (Pintomyia) fischeri (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae), a probable vector of American Cutaneous Leishmaniasis: Detection of natural infection by Leishmania (Viannia) DNA in specimens from the municipality of Porto Alegre (RS), Brazil, using multiplex PCR assay. Acta Tropica , p. 273-275, 2011.
-
Batista, Denise da Gama Jaén ; Batista, Marcos Meuser ; Oliveira, Gabriel Melo de ; BRITTO, C. ; Rodrigues, Ana Carolina Mondaine ; Stephens, Chad E. ; Boykin, David W. ; Soeiro, Maria de Nazaré Correia . Combined Treatment of Heterocyclic Analogues and Benznidazole upon Trypanosoma cruzi In Vivo. Plos One , v. 6, p. e22155, 2011.
-
OLIVEIRA, A. L. ; Antunes S ; TELES, R. M. ; AC, C. S. ; SILVA, T. ; Brandão RT ; Ferreira Medeiros M ; BRITTO, C ; Jardim MR ; SAMPAIO, E. P. ; SARNO, E. . Schwann cells producing matrix metalloproteinases under Mycobacterium leprae stimulation may play a role in the outcome of leprous neuropathy. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology , v. 69, p. 27-39, 2010.
-
Batista, D. d. G. J. ; BATISTA, M. M. ; Oliveira, G. M. d. ; Amaral, P. B. d. ; LANNES-VIEIRA, J. ; BRITTO, CC ; Junqueira, A. ; Lima, M. M. ; Romanha, A. J. ; Sales Junior, P. A. ; Stephens, C. E. ; BOYKIN, D. W. ; Soeiro, M. d. N. C. . Arylimidamide DB766, a Potential Chemotherapeutic Candidate for Chagas' Disease Treatment. Antimicrobial Agents and Chemotherapy (Print) , v. 54, p. 2940-2952, 2010.
-
Rebello, Karina Mastropasqua ; BRITTO, C ; Pereira, Bernardo Acácio Santini ; de Pita-Pereira, Daniela ; Moraes, Milton Ozório ; Ferreira, Anna Beatriz Robottom ; Cysne-Finkelstein, Léa ; Otto, Thomas Dan ; de Castro Cortês, Luzia Monteiro ; da-Silva, Gabriel Gomes ; Alves CR . Leishmania (Viannia) braziliensis: influence of successive in vitro cultivation on the expression of promastigote proteinases. Experimental Parasitology , p. 50-58, 2010.
-
de Carvalho, Maria Rosimery ; Valença, Helio França ; da Silva, Fernando José ; de Pita-Pereira, Daniela ; de Araújo Pereira, Thaís ; Britto, Constança ; Brazil, Reginaldo Peçanha ; Filho, Sinval Pinto Brandão . Natural Leishmania infantum infection in Migonemyia migonei (França, 1920) (Diptera:Psychodidae:Phlebotominae) the putative vector of visceral leishmaniasis in Pernambuco State, Brazil. Acta Tropica , v. 116, p. 108-110, 2010.
-
Lemos ERS ; MARES-GUIA, M. A. M. ; ALMEIDA, D. N. ; SILVA, R. G. ; SILVA, C. M. ; BRITTO, C ; LAMAS, C. C. . Febre do viajante associada com adenite cervical e sororreatividade para Bartonella sp em paciente brasileira, após retorno da África do Sul. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical (Impresso) , v. 43, p. 1-2, 2010.
-
PEREIRA, D. P. ; SOUZA, G. ; ZWETSCH, A. ; Alves CR ; BRITTO, C ; Rangel, EF . First report of Lutzomyia (Nyssomyia) neivai (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae) naturally infected by Leishmania (Viannia) braziliensis in a periurban area of south Brazil using a multiplex polymerase chain reaction assay. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene , v. 80, p. 593-595, 2009.
-
De Jesus, Jose Batista ; Cuervo, Patri?cia ; BRITTO, C ; Sabo?ia-Vahia, Leonardo ; Costa e Silva-Filho, Fernando ; Borges-Veloso, Andre ; Barreiros Petro?polis, De?bora ; Cupolillo, Elisa ; Barbosa Domont, Gilberto . Cysteine Peptidase Expression in Trichomonas vaginalis Isolates Displaying High- and Low-Virulence Phenotypes. Journal of Proteome Research , v. 8, p. 1555-1564, 2009.
-
de Araújo, Josélio M.G. ; de Filippis, Ana M.B. ; Schatzmayr, Hermann G. ; de Araújo, Eliane S.M. ; BRITTO, C ; Cardoso, Maria A. ; Camacho, Luiz A.B. ; Nogueira, Rita M.R. . Quantification of dengue virus type 3 RNA in fatal and non-fatal cases in Brazil, 2002. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene , p. 25-27, 2009.
-
DEARAUJO, J ; SCHATZMAYR, H ; DEFILIPPIS, A ; DOSSANTOS, F ; CARDOSO, M ; BRITTO, C ; COELHO, J ; NOGUEIRA, R . A retrospective survey of dengue virus infection in fatal cases from an epidemic in Brazil. Journal of Virological Methods , v. 155, p. 34-38, 2009.
-
SANTOS, L. O. ; MARINHO, F. A. ; ALTOE, E. C. F. ; VITORIO, B. S. ; Alves CR ; BRITTO, C ; MOTTA, M. C. M. ; BRANQUINHA, M. H. ; SANTOS, A. L. S. ; D'Avila-Levy CM . HIV Aspartyl Peptidase Inhibitors Interfere with Cellular Proliferation, Ultrastructure and Macrophage Infection of Leishmania amazonensis. PloS one (San Francisco, CA) , v. 4, p. e4918-11, 2009.
-
BRITTO, C . Usefulness of PCR-based Assays to Assess Drug Efficacy in Chagas Disease Chemotherapy: Value and Limitations. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , v. 104, p. 122-135, 2009.
-
CUERVO, P. ; CUPOLILLO, E. ; BRITTO, C ; GONZALEZ, L. J. ; SILVA-FILHO, F. C. ; LOPES, A. ; LOPES, L. C. ; Domont, G ; JESUS, J. B. . Differential soluble protein expression between Trichomonas vaginalis isolates exhibiting low and high virulence phenotypes. Journal of Proteomics (Print) , v. 1, p. 10-24, 2008.
-
CUERVO, P ; SANTOS, A ; ALVES, C ; MENEZES, G ; SILVA, B ; BRITTO, C ; FERNANDES, O ; CUPOLILLO, E ; DEJESUS, J . Cellular localization and expression of gp63 homologous metalloproteases in Leishmania (Viannia) braziliensis strains. Acta Tropica , v. 106, p. 143-148, 2008.
-
PITA-PEREIRA, D. DE ; CARDOSO, M. A. ; Alves CR ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, C . Detection of natural infection in Lutzomyia cruzi and Lutzomyia forattinii (Diptera:Psychodidae:Phlebotominae) by Leishmania infantum chagasi in an endemic area of visceral leishmaniasis in Brazil using a PCR multiplex assay. Acta Tropica , v. 107, p. 66-69, 2008.
-
Marin-Neto ; Rassi Jr A ; MORILLO, C. A. ; AVEZUM, A. ; CONNOLLY, S. J. ; SOSA-ESTANI, S. ; ROSAS, F. ; YUSUF, S. ; BRITTO, C ; BENEFIT INVESTIGATORS, C. B. A. B. . Rationale and design of a randomized placebo-controlled trial assessing the effects of etiologic treatment in Chagas' cardiomyopathy:The BENznidazole Evaluation For Interrupting Trypanosomiasis (BENEFIT). The American Heart Journal , v. 156, p. 37-43, 2008.
-
CUERVO, P. ; MESQUITA-RODRIGUES, C. ; LEVY, C. D. M. ; BRITTO, C. ; PIRES, F. A. ; GREDILHA, R. ; Alves CR ; JESUS, J. B. . Serine proteases activities in Oxysarcodexia thornax (Walker) (Diptera: Sarcophagidae) first instar larva. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz , v. 103, p. 504-506, 2008.
-
BORGES-PEREIRA, J. ; SARQUIS, O. ; ZAUZA, P. L. ; BRITTO, C ; LIMA, M. . Epidemiologia da doença de Chagas em quatro localidades rurais de Jaguaruana, Estado do Ceará. Soroprevalência da infecção, parasitemia e aspectos clínicos. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical , v. 41, p. 345-351, 2008.
-
GAMA, B. E. ; SILVA-PIRES, F. E. S. ; LOPES, M. N. R. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C ; TORRES, K. L. ; LIMA, L. M. ; SOUZA, J. M. ; DANIEL-RIBEIRO, C. T. ; FERREIRA-DA-CRUZ, M. F. . Real-time PCR versus conventional PCR for malaria parasite detection in low-grade parasitemia. Experimental Parasitology , v. 116, p. 427-432, 2007.
-
KOMPALIC-CRISTO, A. ; FROTTA, C. ; SUAREZ-MUTIS, M. ; FERNANDES, O. ; BRITTO, C . Evaluation of a real-time PCR assay based on the repetitive B1 gene for the detection of Toxoplasma gondii in human peripheral blood. Parasitology Research , v. 101, p. 619-625, 2007.
-
JESUS, J. B. ; CUERVO, P. ; Junqueira, M ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. ; SOARES, M. J. ; CUPOLILLO, E. ; FERNANDES, O. ; Domont, G . A further proteomic study on the effect of iron in the human pathogen Trichomonas vaginalis. Proteomics , v. 7, p. 1961-1972, 2007.
-
JESUS, J. B. ; CUERVO, P. ; Junqueira, M ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. ; SABOIA-VAHIA, L. ; GONZALEZ, L. J. ; Domont, G . Application of two-dimensional electrophoresis and matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry for proteomic analysis of sexually transmitted parasite Trichomonas vaginalis. Journal of Mass Spectrometry , v. 42, p. 1463-1473, 2007.
-
MEIRELES-FILHO, A. C. ; RIVAS, G. B. S. ; GESTO, J. S. ; MACHADO, R. C. ; BRITTO, C ; SOUZA, N. A. ; PEIXOTO, A. A. . The biological clock of an hematophagous insect: locomotor activity rhythms, circadian expression and down-regulation after a blood meal. FEBS Letters , Heidelberg, v. 580, p. 2-8, 2006.
-
MARTÍNEZ, A. N. ; BRITTO, C ; NERY, J. A. C. ; SAMPAIO, E. P. ; JARDIM, M. ; SARNO, E. ; Moraes MO . Evaluation of real-time and conventional PCR targeting complex 85 genes for detection of Mycobacterium leprae DNA in skin biopsy samples from patients diagnosed with leprosy. Journal of Clinical Microbiology , v. 44, p. 3154-3159, 2006.
-
GENTILE, C. ; MEIRELES-FILHO, A. C. ; BRITTO, C ; LIMA, J. ; VALLE, D. ; PEIXOTO, A. A. . Cloning and daily expression of the timeless gene in Aedes aegypti (Diptera:Culicidae). Insect Biochemistry and Molecular Biology , v. 36, p. 878-884, 2006.
-
JESUS, J. B. ; FERREIRA, M. A. ; CUERVO, P. ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. ; MEYER-FERNANDES, J. . Iron modulates ecto-phosphohydrolase activities in pathogenic trichomonads. Parasitology International , v. 55, p. 285-290, 2006.
-
PEREIRA, D. P. ; Alves CR ; SOUZA, M. B. ; BERTHO, A. L. ; BARBOSA, A. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, C . Identification of Lutzomyia intermedia and Lutzomyia migonei naturally infected with Leishmania (Viannia) braziliensis in Rio de Janeiro (Brazil), revealed by PCR multiplex-linked non isotopic hybridization assay. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene , v. 99, p. 905-913, 2005.
-
POMPILIO, M. A. ; DORVAL, M. E. M. C. ; CUNHA, R. V. ; BRITTO, C ; PEREIRA, J. B. . Epidemiological, clinical and parasitological aspects of Chagas' disease in Mato Grosso do Sul State, Brasil. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical , v. 38, n.6, p. 473-478, 2005.
-
CRISTO, A. K. ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Diagnóstico Molecular da Toxoplasmose - Revisão. Jornal Brasileiro de Patologia e Medicina Laboratorial , v. 41, n.04, p. 229-235, 2005.
-
GARZONI, L. R. ; WAGHABI, M. C. ; BATISTA, M. M. ; CASTRO, S. L. ; MEIRELLES, M. N. L. ; BRITTO, C ; DOCAMPO, R. ; OLDFIELD, E. ; URBINA, J. A. . Antiparasitic activity of risedronate in a murine model of acute Chagas disease. International Journal of Antimicrobial Agents , v. 23, p. 286-290, 2004.
-
CRISTO, A. K. ; Nogueira SA ; Guedes AL ; Frota, C ; Gonzalez LF ; Brandão, A ; AMENDOEIRA, M. R. ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Lack of technical specificity in the molecular diagnosis of toxoplasmosis. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene , v. 98, p. 92-95, 2004.
-
GUTIERREZ, R. ; ANGULO, V. M. ; TARAZONA, Z. ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Comparison of four serological tests for the diagnosis of Chagas disease in a Colombian endemic area. Parasitology (London) , Cambridge University Press, v. 129, p. 439-444, 2004.
-
JESUS, J. B. ; VANNIER-SANTOS, M. ; BRITTO, C ; GODEFROY, P. ; SILVA-FILHO, F. C. ; PINHEIRO, A. ; ROCHA-AZEVEDO, B. ; LOPES, A. ; MEYER-FERNANDES, J. . Trichomonas vaginalis virulence against epithelial cells and morphological variability: the comparison between a well-established strain and a fresh isolate. Parasitology Research , Springer-Verlag Heidelberg, v. 93, n.5, p. 369-377, 2004.
-
CARVALHO, C. M. E. ; ANDRADE, M. C. R. ; XAVIER, S. S. ; MANGIA, R. H. R. ; BRITTO, C ; JANSEN, A. M. ; FERNANDES, O. ; LANNESVIEIRA, J. ; ALMEIDA, M. G. B. . Chronic Chagas disease in Rhesus monkeys (Macaca Mulatta): Evaluation of parasitemia, serology, electrocardiography, echocardiography, and radiology. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene , Estados Unidos, v. 68, n.6, p. 683-691, 2003.
-
PEREIRA, J. B. ; CASTRO, J. A. F. ; RAMOS JR, A. ; CAMPO, J. H. F. ; NOGUEIRA, J. S. ; ZAUZA, P. L. ; MARQUES, P. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C ; ARAUJO, A. J. G. . Estudo da infecção e morbidade da doença de Chagas no município de João Costa - Parque Nacional Serra da Capivara, Piauí, Brasil. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical , Brasil, v. 35, n.4, p. 315-322, 2002.
-
BRITTO, C . Diagnóstico Molecular da Doença de Chagas pela Reação em Cadeia da Polimerase. SIICsalud (Buenos Aires) , v. 1, p. siicsalud.com-0, 2002.
-
BRITTO, C ; SILVEIRA, C. ; CARDOSO, M. A. ; MARQUES, P. ; LUQUETTI, A. ; MACÊDO, V. ; FERNANDES, O. . Parasite persistence in treated chagasic patients revealed by xenodiagnosis and polymerase chain reaction. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz , Brasil, v. 96, n.6, p. 823-826, 2001.
-
FERREIRA, L. F. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; FERNANDES, O. ; REINHARD, K. ; ARAUJO, A. . Paleoparasitology of Chagas 'disease revealed by infected tissues from Chilean mummies. Acta Tropica , Holanda, v. 75, p. 79-84, 2000.
-
PINTO, A. S. ; LANA, M. ; BRITTO, C ; BASTRENTA, B. ; TIBAYRENC, M. . Experimental Trypanosoma cruzi biclonal infection in Triatoma infestans: detection of distinct clonal genotypes using kinetoplast DNA probes. International Journal for Parasitology , v. 30, p. 843-848, 2000.
-
RAVEL, C. ; DUBESSAY, P. ; BRITTO, C ; BLAINEAU, C. ; BASTIEN, P. ; PAGES, M. . High conservation of the fine-scale organization of chromosome 5 between two pathogenic Leishmania species. Nucleic Acids Research , Inglaterra, v. 27, n.12, p. 2473-2477, 1999.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; MARQUES, P. ; FERNANDES, O. ; MOREL, C. M. . Polymerase chain reaction detection: New insights into the diagnosis of chronic Chagas'disease. MEMORIAS DO INSTITUTO OSWALDO CRUZ , Rio de Janeiro, v. 94, n.1, p. 305-306, 1999.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; SILVEIRA, C. ; MACÊDO, V. ; FERNANDES, O. . Polymerase chain reaction as a laboratorial tool to evaluate parasitological cure in Chagas disease after specific treatment. Medicina (Buenos Aires) , Buenos Aires, v. 59, n.2, p. 176-178, 1999.
-
BRITTO, C ; RAVEL, C. ; BASTIEN, P. ; BLAINEAU, C. ; PAGES, M. ; DEDET, J. P. ; WINCKER, P. . Conserved linkage groups associated with large-scale chromosomal rearrangements between Old World and New World Leishmania genomes. Gene (Amsterdam) , Estados Unidos, v. 222, n.1, p. 107-117, 1998.
-
RAVEL, C. ; DUBESSAY, P. ; BLACKWELL, J. ; IVENS, A. C. ; BASTIEN, P. ; BRITTO, C ; WINCKER, P. ; PAGES, M. ; BLAINEAU, C. ; DEDET, J. P. ; ETC . The complete chromosomal organization of the reference strain of the Leishmania Genome Project, L. major Friedlin. Parasitology Today , Estados Unidos, v. 14, n.8, p. 301-303, 1998.
-
WINCKER, P. ; RAVEL, C. ; BRITTO, C ; DUBESSAY, P. ; BASTIEN, P. ; PAGES, M. ; BLAINEAU, C. . A Direct Method for the Chromosomal Assignment of DNA Markers in Leishmania. Gene (Amsterdam) , Estados Unidos, v. 194, p. 77-80, 1997.
-
RAVEL, C. ; WINCKER, P. ; BLAINEAU, C. ; BRITTO, C ; BASTIEN, P. ; PAGES, M. . Medium-Range Restriction Maps of Five Chromosomes of Leishmania infantum and Localization of Size-Variable Regions. Genomics (San Diego) , Inglaterra, v. 35, p. 509-516, 1996.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; VANNI, M. C. M. ; HASSLOCHER, A. M. ; XAVIER, S. S. ; OELEMANN, W. ; SANTORO, A. ; PIRMEZ, C. ; MOREL, C. M. ; WINCKER, P. . Polymerase Chain Reaction Detection of Trypanosoma cruzi in Human Blood Samples as a Tool for Diagnosis and Treatment Evaluation. Parasitology (London. Print) , Inglaterra, v. 110, p. 241-247, 1995.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; RAVEL, C. ; SANTORO, A. ; PEREIRA, J. B. ; COURA, J. R. ; MOREL, C. M. ; WINCKER, P. . Trypanosoma cruzi:Parasite Detection and Strain Discrimination in Chronic Chagasic Patients From North-Eastern Brazil Using PCR Amplification of Kinetoplast DNA and Non-Radioactive Hybridization. Experimental Parasitology , Holanda, v. 81, p. 462-471, 1995.
-
WINCKER, P. ; BRITTO, C ; PEREIRA, J. B. ; CARDOSO, M. A. ; OELEMANN, W. ; MOREL, C. M. . Use of a Simplified Polymerase Chain Reaction Procedure to Detect Trypanosoma cruzi in Blood Samples from Chronic Chagasic Patients in a Rural Endemic Area. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene , Holanda, v. 51, n.6, p. 771-777, 1994.
-
WINCKER, P. ; BOSSENO, M. F. ; BRITTO, C ; YAKSIC, N. ; CARDOSO, M. A. ; MOREL, C. M. ; BRENIERE, S. F. . High Correlation Between Chagas'Disease Serology and PCR- Based Detection of Trypanosoma cruzi Kinetoplast DNA in Bolivian Children Living in an Endemic Area. FEMS MICROBIOLOGY LETTERS , v. 124, p. 419-424, 1994.
-
DEGRAVE, W. ; FERNANDES, O. ; WINCKER, P. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; BOZZA, M. ; LOPES, U. ; MOREL, C. M. . Detection of Trypanosoma cruzi and Leishmania using the Polymerase Chain Reaction. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz , Rio de Janeiro, v. 89, n.3, p. 367-368, 1994.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; WINCKER, P. ; MOREL, C. M. . A Simple Protocol for the Physical Cleavage of Trypanosoma cruzi Kinetoplast DNA Present in Blood Samples and its Use in Polymerase Chain Reaction (PCR) - Based Diagnosis of Chronic Chagas Disease. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz (Impresso) , Rio de Janeiro, v. 88, n.1, p. 171-172, 1993.
-
DEGRAVE, W. ; FRAGOSO, S. P. ; BRITTO, C ; HEVERSWYN, H. V. ; KIDANE, G. ; CARDOSO, M. A. ; MUELLER, R. ; SIMPSON, L. ; MOREL, C. M. . Peculiar Sequence Organization of Kinetoplast DNA Minicircles from Trypanosoma cruzi. MOLECULAR AND BIOCHEMICAL PARASITOLOGY , Holanda, v. 27, p. 63-70, 1988.
-
Trindade, Gisela Freitas ; de Lima, Sheila Maria Barbosa ; BRITTO, CONSTANÇA ; Fernandes-Monteiro, Alice Gomes . Detection of Yellow Fever Virus by Quantitative Real-Time PCR (qPCR). In: Roberto Biassoni, Alessandro Raso. (Org.). Methods in Molecular Biology. 2eded.Switzerland: Springer New York, 2020, v. 2065, p. 65-77.
-
CONSTANÇA BRITTO ; PITA-PEREIRA, D. DE . Diagnóstico Molecular de Leishmania spp. em Flebótomos Provenientes de Áreas de Ocorrência de Leishmanioses. In: Fátima da Conceição Silva; Carlos Roberto Alves. (Org.). Leishmanioses do Continente Americano. 1ed.Rio de Janeiro: Fiocruz Editora, 2014, v. 1, p. 217-231.
-
BRITTO, C. ; PIRMEZ, C. ; CABURO JUNIOR, N. ; FERNANDES, O. . Técnicas Básicas de Diagnóstico Molecular em Doenças Infecciosas e Parasitárias. In: José Rodrigues Coura. (Org.). Dinâmica das Doenças Infecciosas e Parasitárias. 2.ed.Rio de Janeiro: GEN - Guanabara Koogan, 2013, v. 1, p. 3-1173.
-
BRITTO, C ; LIMA, M. . 95 Anos da História do Xenodiagnóstico e sua Contribuição para o Diagnóstico Etiológico da Doença de Chagas. In: José da Rocha Carvalheiro; Nara Azevedo; Tânia C. de Araújo-Jorge; Joseli Lannes-Vieira; Maria de Nazaré Correia Soeiro; Lisabel Klein. (Org.). Clássicos em Doença de Chagas: História e Perspectivas no Centenário da Descoberta. Ied.Rio de Janeiro: FIOCRUZ, 2009, v. I, p. 195-200.
-
BRITTO, C ; PIRMEZ, C. ; FERNANDES, O. . Técnicas Básicas de Diagnóstico Molecular em Doenças Infecciosas e Parasitárias. In: José Rodrigues Coura. (Org.). Dinâmica das Doenças Infecciosas e Parasitárias. Ied.Rio de Janeiro: Guanabara Koogan S.A., 2005, v. I, p. 195-213.
-
BRITTO, C ; SILVEIRA, C. ; LUQUETTI, A. ; MACÊDO, V. ; FERNANDES, O. . The application of PCR to follow-up specific treatment of Chagas disease - a promising tool to serology in addressing cure. In: Alvaro Moncayo. (Org.). Organização Mundial da Saúde. : , 2001, v. , p. -.
-
FERNANDES, O. ; BRITTO, C ; PIMENTEL, M. M. G. ; KHAN, B. . Molecular methods - Use of radionuclids in molecular biology. In: Bradipt Khan. (Org.). Handbook of Nuclear Medicine Practice in Developing Countries. International Atomic Energy Agency, Nuclear Medicine Division. Viena: , 2000, v. , p. -.
-
BRITTO, C ; MOREIRA, O. . Avanço no diagnóstico molecular da doença de Chagas. Ciência Hoje, 23 mar. 2023.
-
CONSTANÇA BRITTO ; MOREIRA, O. C. . Anvisa approves first kit for molecular diagnosis of Chagas disease. Boletim da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, Brasília - Medicina Tropical, 09 jul. 2022.
-
BRITTO, CONSTANÇA ; MOREIRA, O. C. . Anvisa aprova kit para diagnóstico molecular da doença de Chagas feito pela Fiocruz. Jornal do Estado do Piauí, Piauí - cidadeverde.com, 23 jun. 2022.
-
CONSTANÇA BRITTO ; MOREIRA, O. C. . Fiocruz registra primeiro kit para diagnóstico molecular de Chagas. Portal Fiocruz, Rio de janeiro - Fiocruz, 23 jun. 2022.
-
CONSTANÇA BRITTO ; MOREIRA, O. C. . Kit NAT Chagas da Fiocruz, é o primeiro kit para diagnóstico molecular da doença de Chagas autorizado pela Anvisa. INFORME IOC, Rio de Janeiro - IOC/Fiocruz, 21 jun. 2022.
-
BRITTO, C. ; MOREIRA, OTACILIO C. . Após 113 anos Doença de Chagas ainda é motivo de preocupação. BOLETIM FAPERJ, Rio de Janeiro - FAPERJ, 13 abr. 2022.
-
BRITTO, C ; Schijman, Alejandro G. . Estado del arte qPCR: Aplicación en el seguimiento de la respuesta terapéutica de la enfermedad de Chagas. INFORMATIVO - Plataforma de Investigación Clínica en Enfermedad de Chagas DNDi, Rio de Janeiro, p. 10 - 11, 03 set. 2012.
-
SILVA, R. I. ; ALVES, G. ; ORNELLAS, A. ; DOBBIN, J. ; BRITTO, C.C. ; HATAGIMA, A. ; LEITAO, A. ; LAGE, C. . Avaliação inicial sobre o impacto de polimorfismos em genes de reparo de DNA e o risco de Leucemia Linfóide Aguda. In: II Simpósio de Oncobiologia, 2008, Rio de Janeiro. II Simpósio de Oncobiologia, 2008. v. X. p. 36-39.
-
BRITTO, C . Procedimentos operacionais da PCR visando o estudo BENEFIT. In: BENEFIT International Meeting, 2006, São Paulo. Manual de Operações - The BENEFIT trial: BENznidazole Evaluation For Interrupting Trypanosomiasis, 2006. v. X.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; MOREL, C. ; PEREIRA, J. B. ; HASSLOCHER, A. M. ; SILVEIRA, C. ; LUQUETTI, A. ; MACÊDO, V. ; FERNANDES, O. . Molecular Diagnosis of Chronic Chagas Disease - The State of Art. In: VII Congreso Argentino de Protozoología y Enfermedades Parasitarias, 2005, Mendoza. Acta Bioquímica Clínica Latinoamericana. La Plata: Federación Bioquímica de La Provincia de Buenos Aires, 2005. p. 48-49.
-
BRITTO, C ; SILVEIRA, C. ; MACÊDO, V. ; PEREIRA, J. B. ; CARDOSO, A. ; MARQUES, P. ; FERNANDES, O. . A reação em cadeia da polimerase como método de avaliação de cura da infecção chagásica pós-tratamento etiológico. In: XVI Reunião Anual de Pesquisa Aplicada em Doença de Chagas, 2000, Uberaba, MG. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2000. v. 33. p. 53-55.
-
VERLY, THAIANE ; LIMA, N. ; BELINE, N. ; COSTA, S. ; GALVAO, C. ; PEREIRA, M. ; MOREIRA, C. ; MALLET, J. ; PAVAN, M. ; BRITTO, CONSTANÇA . Avaliação da importância epidemiológica de espécies do subcomplexo T. rubrovaria através da análise de competência vetorial e hábito alimentar. In: 54 Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical - MEDTROP 2018, 2018, Olinda. MEDTROP 2018, 2018.
-
JUSTINO, M. C. ; ALVES, G. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; Quirino R ; ORNELLAS, A. ; LEITAO, A. ; LAGE, C. . Expressão diferencial de genes de reparo de DNA humano e a sua correlação com o grau de malignidade dos tumores de bexiga. In: IV Simpósio de Oncobiologia da UFRJ, 2010, Rio de Janeiro. V Simpósio de Oncobiologia da UFRJ, 2010. v. X. p. 0-0.
-
OLIVEIRA, T. G. ; CARVALHO-COSTA, F. A. ; COUTINHO, C. F. S. ; BOIA, M. N. ; BRITTO, C ; JANSEN, A. ; DANDREA, P. S. ; SARQUIS, O. ; LIMA, M. . Eco-epidemiology of Chagas disease in periurban areas in the municipality of Jaguaruana State of Ceará, Brazil. In: Simpósio Internacional Comemorativo do Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009, Rio de Janeiro. Centenário da Descoberta da Doença de Chagas. RJ: FIOCRUZ, 2009. v. 1. p. 0-2.
-
MARTINS, L. Z. ; CARDOSO, M. A. ; RODRIGUES, A. C. M. ; LIMA, A. C. S. ; OLIVEIRA, C. C. S. ; D'Avila-Levy CM ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . DOES THE kDNA CONTENT FROM DISTINCT TRYPANOSOMA CRUZI GENOTYPE GROUPS INTERFERE ON THE PERFORMANCE OF REAL-TIME PCR ASSAYS FOR THE DIAGNOSIS OF CHAGAS DISEASE?. In: Simpósio Internacional Comemorativo do Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009, RJ. Centenário da Descoberta da Doença de Chagas. RJ: FIOCRUZ, 2009. v. 1. p. 1-2.
-
BATISTA, D. G. J. ; MEUSER, M. B. ; PACHECO, M. ; LANNES-VIEIRA, J. ; LIMA, M. ; BRITTO, C ; BOYKIN, D. W. ; SOEIRO, M. N. . Activity of a new arylimidamide against Trypanosoma cruzi in vitro and in vivo. In: Simpósio Internacional Comemorativo do Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009, RJ. Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009.
-
JUSTINO, M. C. ; LAGE, C. ; BRITTO, C ; CARDOSO, A. ; Quirino R ; ORNELLAS, A. ; LEITAO, A. ; ALVES, G. . Alteração do perfil de expressão em genes de reparo de DNA e a evolução do câncer de bexiga. In: II Simpósio de Oncobiologia, 2008, Rio de Janeiro. Instituto de Bioquímica Médica - II Simpósio de Oncobiologia. Rio de Janeiro: Programa de Oncobiologia, 2008. v. X. p. 43-45.
-
JESUS, J. B. ; CUERVO, P. ; BRITTO, C ; SABOIA-VAHIA, L. ; SILVA-FILHO, F. C. ; Domont, G . Effect of iron availability on cysteine proteinase expression and protein profiles of human pathogen Trichomonas vaginalis. In: 2nd Congress of the Spanish Proteomics Society, 2007, Valencia. Proteómica - Boletín de La Sociedad Española de Proteómica. Valencia: SEPRO - Sociedad Española de Proteómica, 2007. v. X. p. 227-227.
-
SOUZA, D. R. ; ARAUJO-PEREIRA, T. ; BRITTO, C. ; PITA-PEREIRA, D. . ESTUDO DA ECOEPIDEMIOLOGIA DAS LEISHMANIOSES NO MUNICÍPIO DE BARRA DO PIRAÍ, ESTADO DO RIO DE JANEIRO, TENDO COMO FOCO O INSETO VETOR. In: 57o Congresso da SBMT, 2022, Belém. 57o Congresso da SBMT, 2022.
-
SOUSA, R. L. T. ; Araujo-Pereira T ; LEAL, A. R. S. ; CONSTANÇA BRITTO ; PITA-PEREIRA, D. ; CARVALHO, B. M. . MODELAGEM DE NICHO ECOLÓGICO DE FLEBOTOMÍNEOS DIPTERA_ PSYCHODIDAE EM ÁREAS DE TRANSMISSÃO DE LEISHMANIOSE VISCERAL E LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA NO ESTADO DO PIAUÍ, BRASIL. In: 57o Congresso da SBMT, 2022, Pará. 57o Congresso da SBMT, 2022.
-
LIMA, A. C. B. ; SARAIVA, R. M. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . Estudo da associação de biomarcadores para Trypanosoma cruzi e humanos em uma coorte de pacientes com diferentes formas clínicas da doença de Chagas crônica. In: 54 Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical - MedTrop 2018, 2018, Olinda. MEDTROP 2018, 2018.
-
FERREIRA, J. S. ; NEUMANN, A. S. ; DCC, U. ; RANGEL, C. P. ; PESSOLANI, M. C. V. ; MALLET, J. R. S. ; ROSA, P. S. ; GARLET, A. P. F. T. ; BRITTO, C ; OLIVEIRA, P. L. ; FONSECA, A. H. D. ; Moraes, Milton Ozório ; LARA, F. A. . ANALYSIS OF PERSISTENCE OF MYCOBACTERIUM LEPRAE IN AMBLYOMMA CAJENNENSE AND RHODNIUS PROLIXUS AFTER INFECTION BY ARTIFICIAL FEEDING. In: 18th International Leprosy Congress, 2013, Bruxelas. 18th International Leprosy Congress, 2013. v. 0. p. 1-1.
-
GOMES, S. A. ; VERLY, T. S. ; ARAUJO, P. F. ; LOPES, C. M. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . Molecular diagnosis to evaluate sylvatic triatomine infection by Trypanosoma cruzi. In: XXI Congreso Latinoamericano de Parasitología Dr Pedro Morera Villalobos, 2013, Guayaquil. XXI Congreso Latinoamericano de Parasitología Dr Pedro Morera Villalobos, 2013. v. 0. p. 5-5.
-
VERLY, T. S. ; ARAUJO, P. F. ; LOPES, C. M. ; GOMES, S. A. ; CRUZ, O. M. ; BRITTO, C . MOLECULAR DIAGNOSIS TO EVALUATE SYLVATIC TRIATOMINE INFECTION BY Trypanosoma cruzi. In: XXIII Congresso Brasileiro de Parasitologia, III Encontro de Parasitologia do Mercosul, 2013, Florianópolis. XXIII Congresso Brasileiro de Parasitologia, III Encontro de Parasitologia do Mercosul, 2013. v. 0. p. 7-7.
-
FERREIRA, C. L. ; MOREIRA, O. C. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C . Desenvolvimento de um ensaio de PCR em tempo real para a medida da carga parasitária e tipagem molecular de Trypanosoma cruzi: comparação entre os sistemas TaqMan e SYBR Green. In: Ciclo Carlos Chagas de Palestras, 2013, Rio de Janeiro. Ciclo Carlos Chagas de Palestras da Fiocruz, 2013. v. 0. p. 9-9.
-
FERNANDES, M. C. P. ; MENDES, C. V. ; MELO, M. F. A. D. ; CARDOSO, M. A. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . Detecção e quantificação da carga parasitária de pacientes portadores da doença de Chagas crônica participantes do estudo BENEFIT. In: Ciclo Carlos Chagas de Palestras, 2013, Rio de Janeiro. Ciclo Carlos Chagas de Palestras da Fiocruz, 2013. v. 0. p. 11-11.
-
ARAUJO, P. F. ; MOREIRA, O. C. ; GOMES, S. A. ; BRITTO, C . DIAGNÓSTICO MOLECULAR E AVALIAÇÃO DA CARGA PARASITÁRIA EM TRIATOMÍNEOS SILVESTRES INFECTADOS POR Trypanosoma cruzi. In: XXI Jornada de Iniciação Científica (PIBIC) RAIC, 2013, Rio de Janeiro. Jornada de Iniciação Científica (PIBIC) RAIC - Fiocruz, 2013.
-
FERREIRA, C. L. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . Desenvolvimento de um ensaio de PCR em tempo real para a medida da carga parasitária e tipagem molecular de Trypanosoma cruzi: comparação entre os sistemas TaqMan e SYBR Green. In: XXI Jornada de Iniciação Tecnológica (PIBITI) RAIC, 2013, Rio de Janeiro. Jornada de Iniciação Tecnológica (PIBITI) RAIC - Fiocruz, 2013.
-
SOARES, M. C. A. O. ; MELO, M. F. A. D. ; BRITTO, C . ANÁLISE DA COMPOSIÇÃO DE SEQUENCIAS DA REGIÃO 5 UTR DA FAMÍLIA DE TRANS-SIALIDASES DE DUAS CEPAS REPRESENTATIVAS DE TRYPANOSOMA CRUZI.. In: Jornada do Programa de Vocação Científica (PROVOC Iniciação), 2013, Rio de Janeiro. Jornada do Programa de Vocação Científica (PROVOC), 2013.
-
PEREIRA, T. A. ; PEREIRA, D. P. ; BOITE, M. ; MOTA, F. ; MELO, M. F. A. D. ; REGO, T. A. N. C. ; RODRIGUES, A. F. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, C . Taxonomic identification and diagnostic evaluation of natural infection by Leishmania spp. in the sandfly fauna (Diptera: Psychodidae) of Rio Branco municipality (Acre, Brazil) using molecular assays. In: XXIX Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology and XL Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2013, Caxambu. XXIX Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology and XL Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2013. v. I. p. 107-107.
-
FERNANDES, A. G. ; Honorato, A.O. ; Yamanura, A.M.Y. ; BRITTO, C. ; LIMA, S. . DEVELOPMENT OF TWO MOLECULAR METHODS BASED ON REAL TIME PCR BY SYBR GREEN AND TAQMAN TO DETECTION AND QUANTIFICATION OF YELLOW FEVER 17D VIRUS. In: XXIII Congresso Brasileiro de Virologia & VII Encontro de Virologia do Mercosul, 2012, Foz do Iguaçu, Paraná. XXIII Congresso Brasileiro de Virologia & VII Encontro de Virologia do Mercosul, 2012. v. X. p. 0-00.
-
Ramirez, JC ; CURA, C. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C. ; YADON, Z. ; SCHIJMAN, A. . TALLER INTERNACIONAL DE VALIDACION ANALITICA DE PCR EN TIEMPO REAL PARA LA CUANTIFICACION DE CARGA PARASITARIA EN INDIVIDUOS CON ENFERMEDAD DE CHAGAS. In: XXV Reunión Científica Anual de la Sociedad Argentina de Protozoología y Enfermedades Parasitarias, 2012, Buenos Aires, Argentina. 50º Aniversario del ?Programa Nacional de Chagas? y del Instituto Nacional de Parasitología ?Dr. Mario Fatala Chaben?, 2012. v. XX. p. 1-2.
-
GALDINO, T. S. ; BRITTO, C.C. ; Brandão, A . Analysis of 5' untranslated region in trans-sialidase annoted sequences in the T. cruzi genomes. In: ASBMB Annual Meeting held in conjunction with Experimental Biology, 2011, Washington. ASBMB 2011 Annual Meeting. Washington, 2011. v. x. p. 0-00.
-
De Jesus, Jose Batista ; CUERVO, P. ; SABOIA-VAHIA, L. ; BORGES-PEREIRA, J. ; BORGES-VELOSO, A. ; BRITTO, C ; FERNANDES, N. S. ; SOUZA, E. M. ; WAGHABI, M. C. . Iron modulates peptidase expression, cytotoxicity to epithelia cells and pseudocyst formation in Trichomonas vaginalisl. In: 36th FEBS Congress, 2011, Torino (Turin). 36th FEBS Congress, 2011. v. X. p. 50-50.
-
VILELA, M. L. ; PITA-PEREIRA, D. DE ; GRASER, C. ; BRITTO, C ; Rangel, EF . Lutzomyia (Psychodopygus) complexa (Diptera:Psychodidae: Phlebotominae), a putative vector of American Cutaneous Leishmaniasis in Guaraí municipality, Tocantins State, Brazil.. In: 7th International Symposium on Phlebotomine Sandflies, 2011, Turquia. 7th International Symposium on Phlebotomine Sandflies, 2011. v. Y. p. 125-125.
-
MOREIRA, O. C. ; VIDAL, V. E. ; BRITTO, C ; BARRABIN, H. . Inhibition of ecto-ATPase activity by CrATP interferes in the promastigote-macrophage interaction in Leishmania amazonensis infection. In: Experimental Biology 2011, 2011, Washington. Experimental Biology 2011, 2011. v. X. p. 52-52.
-
FERNANDES, A. G. ; Honorato, A.O. ; Yamanura, A.M.Y. ; BRITTO, C. ; LIMA, S. . STANDARDIZATION AND VALIDATION OF QUANTITATIVE RT-PCR ASSAYS FOR QUANTITATION OF YELLOW FEVER ON CLINICAL SAMPLES. In: XXII Congresso Brasileiro de Virologia e VI Encontro de Virologia do Mercosul, 2011, Atibaia, São Paulo. XXII Congresso Brasileiro de Virologia e VI Encontro de Virologia do Mercosul, 2011. v. X. p. 0-00.
-
BATISTA, D. G. J. ; BATISTA, M. M. ; OLIVEIRA, G. M. ; BRITTO, C ; RODRIGUES, A. C. M. ; Stephens, C. E. ; BOYKIN, W. ; SOEIRO, M. N. . Combined treatment of heterocyclic analogues and benznidazole upon Trypanosoma cruzi in vivo. In: XXVI Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2010, Foz do Iguaçu. XXVI Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2010. v. X. p. 229-229.
-
UEHARA, L. A. ; ALBUQUERQUE-CUNHA, M. ; SANTOS, A. L. S. ; BRANQUINHA, M. H. ; AZAMBUJA, P. ; BRITTO, C ; LEVY, C. M. D. . Cruzipain promotes Trypanosoma cruzi adhesion to Rhodnius prolixus explanted midguts. In: XXVI Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2010, Foz do Iguaçu. XXVI Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2010. v. X. p. 149-149.
-
FERREIRA, C. L. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . DESENVOLVIMENTO DE UM ENSAIO DE PCR EM TEMPO REAL PARA A MEDIDA DA CARGA PARASITÁRIA E TIPAGEM MOLECULAR DE TRYPANOSOMA CRUZI: COMPARAÇÃO ENTRE OS SISTEMAS TAQMAN E SYBR GREEN. In: XVIII Reunião Anual de Iniciação Científica - FIOCRUZ, 2010, Rio de Janeiro. XVIII Reunião Anual de Iniciação Científica - FIOCRUZ, 2010. v. X. p. 0-0.
-
AZEVEDO, L. R. ; GOMES, S. A. ; D'Avila-Levy CM ; LOPES, C. M. ; PEREIRA, D. P. ; BRITTO, C . Desenvolvimento de um ensaio molecular de PCR multiplex para a avaliação de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi. In: XVIII Reunião Anual de Iniciação Científica - FIOCRUZ, 2010, Rio de Janeiro. XVIII Reunião Anual de Iniciação Científica - FIOCRUZ, 2010. v. X. p. 0-0.
-
Castro, ROS ; Lacerda GL ; BRITTO, C ; D'Avila-Levy CM ; BARRABIN, H. ; MOREIRA, O. C. . Inhibition of Ecto-ATPase by CrATP Changes Promastigote-macrophage Interaction in Leishmania amazonensis. In: XXXVIII Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Bioquímica e Biologia Molecular, 2010, Foz do Iguaçu. XXXVIII Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Bioquímica e Biologia Molecular, 2010. v. X. p. 0-0.
-
De Jesus, Jose Batista ; FERNANDES, N. ; CUERVO, P ; Sabo?ia-Vahia, Leonardo ; BRITTO, C ; Domont, G . TRICHOMONAS VAGINALIS CYSTEINE PEPTIDASE MODULATES APOPTOSIS OF EPITHELIAL CELLS. In: 4th EuPA Meeting; 6th ProCura Meeting, 2010, Estoril. 4th EuPA Meeting; 6th ProCura Meeting. Estoril, 2010. v. X. p. 110-110.
-
AZEVEDO, L. R. ; PEREIRA, T. A. ; LOPES, C. ; GOMES, S. A. ; PEREIRA, D. P. ; LEVY, C. M. D. ; BRITTO, C . A multiplex polymerase chain reaction assay for the diagnosis of naturally infected triatomines by Trypanosoma cruzi. In: Simpósio Internacional Comemorativo do Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009, RJ. Centenário da Descoberta da Doença de Chagas. RJ: Fiocruz, 2009. v. 1. p. 01-02.
-
AZEVEDO, L. R. ; PEREIRA, D. P. ; LEVY, C. M. D. ; BRITTO, C . Ensaios moleculares para avaliação de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi empregando PCR multiplex e PCR em tempo real. In: XVII Jornada de Iniciação Científica IOC/FIOCRUZ, 2009, RJ. XVII Jornada de Iniciação Científica IOC/FIOCRUZ, 2009. v. 1. p. 01-2.
-
MELO, M. F. A. D. ; MOUTINHO, P. T. ; LORENA, I. M. B. ; LORENA, V. ; BRITTO, C ; GOMES, Y. . Padronização da reação em cadeia da polimerase para detecção de DNA de Trypanosoma cruzi.. In: MEDITROP 2009- XLV Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2009, Recife. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2009. v. 42. p. 145-145.
-
MOUTINHO, P. T. ; MELO, M. F. A. D. ; Braz, SC ; LORENA, I. M. B. ; LORENA, V. ; BRITTO, C ; GOMES, Y. . Avaliação do desempenho de dois métodos de extração de DNA de Trypanosoma cruzi em amostras de soro de pacientes chagásicos crônicos. In: XLV-Congresso da Sociedade Brasileira de Medicna Tropical, 2009, Recife. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2009. v. 42. p. 153-153.
-
MELO, M. F. A. D. ; MOUTINHO, P. T. ; Braz, SC ; LORENA, I. M. B. ; LORENA, V. ; BRITTO, C ; GOMES, Y. . COMPARISON OF EFFECTIVENESS OF THREE METHODS FOR OBTAINING DNA OF TRYPANOSOMA CRUZI FROM SERUM OF CHRONIC CHAGASIC PATIENTS. In: Simpósio Internacional Comemorativo do Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009, RJ. Centenário da Descoberta da Doença de Chagas, 2009. v. 1. p. 01-02.
-
MARTINS, L. Z. ; CARDOSO, M. A. ; MOREIRA, O. C. ; BRITTO, C . Desenvolvimento de um ensaio de PCR em Tempo-Real par a medida da carga parasitária em insetos vetores e em indivíduos infectados com Trypanosoma cruzi... In: Jornada de Iniciação Tecnológica - Fiocruz, 2009, RJ. II Jornada de Iniciação Tecnológica - PDTIS/FIOCRUZ, 2009.
-
PEREIRA, T. A. ; PEREIRA, D. P. ; BRITTO, C . Avaliação de infeção Natural de flebotomíneos(Dípra: Psychodidaae) por Leishmania spp. coletados no município de Porto Alegre (RS) empregando ensaios de PCR-multiplex. In: XVII Jornada de Iniciação Científica da FIOCRUZ, 2009, RJ. XVII Jornada de Iniciação Científica da FIOCRUZ, 2009.
-
BROWN, G. A. ; JUSTINO, M. C. ; LAGE, C. ; BRITTO, C ; CARDOSO, A. ; ORNELLAS, A. ; LEITAO, A. . DNA repair genes transcripts quantification in low and high grade bladder tumours. In: Joint ECCO 15 - 34 th ESMO Multidisciplinary Congress, 2009, Berlin. EJC Supplements. Amsterdam: Elsevier, 2009. v. 7. p. 446-446.
-
SILVA, R. I. ; JUSTINO, M. ; LAGE, C. ; BRITTO, C.C. ; CARDOSO, M. A. ; Quirino R ; LEITAO, A. ; ALVES, G. . Identification of diferentially expressed DNA repair genes in human bladder cancer. In: V Congresso Franco-Brasileiro de Oncologia, 2008, Rio de Janeiro. V Congresso Franco-Brasileiro de Oncologia, 2008. v. X. p. 00-01.
-
SILVA, R. I. ; ALVES, G. ; ORNELLAS, A. ; DOBBIN, J. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; HATAGIMA, A. ; LEITAO, A. ; LAGE, C. . Initial quantitative analysis of the relative transcript levels of DNA repair genes and characterization of impact of polymorphisms in these genes in early response to chemotherapy in patients with acute leukemia lymphoblastic. In: V Congresso Franco-Brasileiro de Oncologia, 2008, Rio de Janeiro. V Congresso Franco-Brasileiro de Oncologia, 2008. v. X. p. 01-02.
-
SILVA, R. I. ; ALVES, G. ; ORNELLAS, A. ; DOBBIN, J. ; BRITTO, C. ; HATAGIMA, A. ; LEITAO, A. ; LAGE, C. . Caracterização inicial sobre o impacto de polimorfismos nos genes de reparo de DNA XPA, XPD, XRCC1, XRCC3 e RAD51 com o risco de Leucemia Linfóide Aguda. In: XI Congresso Brasileiro de Oncologia Pediátrica, 2008, Porto Alegre. XI Congresso Brasileiro de Oncologia Pediátrica, 2008. v. X. p. 03-03.
-
ZANELLA, L. M. ; BRITTO, C . Desenvolvimento de um ensaio de PCR em Tempo Real para a medida da carga parasitária em indivíduos infectados com Trypanosoma cruzi. In: I Congresso de Iniciação Científica do Curso de Biologia, Indicadores de Saúde e Ambiente, Universidade Gama Filho, 2008, Rio de Janeiro. Indicadores de Saúde e Ambiente, Universidade Gama Filho, 2008. v. X. p. 04-04.
-
ZANELLA, L. M. ; D'Avila-Levy CM ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C. . Desenvolvimento de um ensaio de PCR em Tempo-Real para a medida da carga parasitária em indivíduos infectados com Trypanosoma cruzi. In: Jornada de Iniciação Tecnológica - PIBITI /FIOCRUZ, 2008, Rio de Janeiro. Jornada de Iniciação Tecnológica - PIBITI /FIOCRUZ, 2008. v. X. p. 00.
-
AZEVEDO, L. R. ; BRITTO, C ; D'Avila-Levy CM . Desenvolvimento de ensaios moleculares para avaliação de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi empregando PCR multiplex e PCR em Tempo Real.. In: XVI Reunião Anual de Iniciação Científica da Fiocruz, 2008, Rio de Janeiro. XVI Reunião Anual de Iniciação Científica da Fiocruz, 2008. v. X. p. 00.
-
ALTOE, E. C. F. ; VITORIO, B. S. ; UEHARA, L. A. ; CASTRO, D. P. ; SANTOS, L. O. ; BRITTO, C ; BRANQUINHA, M. H. ; SANTOS, A. L. S. ; LIMA, A. ; GARCIA, E. S. ; PENNA, P. A. ; D'Avila-Levy CM . Cysteine protease inhibitors reduce Trypanosoma cruzi adhesion to an insect host model.. In: XXXV Annual Meeting on Basic Chagas Disease, XXIV Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2008, Águas de Lindoia. XXXV Annual Meeting on Basic Chagas Disease, XXIV Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2008. v. XX. p. 19-19.
-
SOUZA, G. ; PITA-PEREIRA, D. DE ; ZWETSCH, A. ; BRITTO, C ; Rangel, EF . Evidência da importância de Lutzomyia (Nyssomyia) neivai (Diptera:Psychodidae:Phlebotominae) como potencial vetor de Leishmaniose Tegumentar Americana, no município de Porto Alegre, através da técnica de PCR-multiplex. In: 44 Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2008, Porto Alegre. 44 Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2008. v. XX. p. 50-50.
-
PITA-PEREIRA, D. DE ; SOUZA, G. ; ZWETSCH, A. ; Alves CR ; BRITTO, C. ; Rangel, EF . First report of Lutzomyia (Nyssomyia) neivai (Diptera:Psychodidae:Phlebotominae) naturally infected by Leishmania (V.) braziliensis in a periurban area of south Brazil, State of Rio Grande do Sul, using a PCR multiplex assay. In: 6 th International Symposium on Phlebotomine Sandflies, 2008, Lima, Peru. 6 th International Symposium on Phlebotomine Sandflies, 2008. v. XX. p. 00-00.
-
VITORIO, B. S. ; SANTOS, L. O. ; ALTOE, E. C. F. ; BRITTO, C ; SANTOS, A. L. S. ; BRANQUINHA, M. H. ; LEVY, C. M. D. . gp63 molecules in Blastocrithidia culicis mediate adhesion to insect gut epithelium. In: XXXV Annual Meeting on Basic Chagas Disease, XXIV Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2008, Águas de Lindóia. XXXV Annual Meeting on Basic Chagas Disease, XXIV Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2008. v. XX. p. 117-117.
-
PITA-PEREIRA, D. DE ; PEREIRA, T. A. ; MENDES, C. V. ; VIEIRA, L. R. ; CARDOSO, A. B. ; SOUZA, G. ; ZWETSCH, A. ; Alves CR ; Rangel, EF ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, C . The use of PCR multiplex assays to identify phlebotomine specimens naturally infected by Leishmania (Leishmania) infantum chagasi and Leishmania (Viannia) braziliensis in endemic Brazilian areas of visceral and cutaneous leishmaniasis. In: XXXV Annual Meeting on Basic Research in Chagas´Disease; XXIV Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2008, Águas de Lindoia. XXXV Annual Meeting on Basic Research in Chagas´Disease; XXIV Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2008. v. xx. p. 204-205.
-
SANTOS, L. O. ; BRANQUINHA, M. H. ; SANTOS, A. L. S. ; BRITTO, C. ; Alves CR ; ZANELLA, L. M. ; VITORIO, B. S. ; LEVY, C. M. D. . Effect of the HIV protease inhibitors on promastigote forms of Leishmania amazonensis. In: XXXVII Annual Meeting of SBBq and XI Congress of the PABMB, 2008, Águas de Lindóia. XXXVII Annual Meeting of SBBq and XI Congress of the PABMB, 2008. v. XX. p. 00.
-
PITA-PEREIRA, D. DE ; CARDOSO, M. A. ; PEREIRA, T. A. ; BRAZIL, R. P. ; BRITTO, C . Estudo de avaliação de infecção natural da fauna flebotomínea em áreas de ocorrência de leishmanioses no Brasil utilizando abordagens moleculares de PCR convencional e PCR em Tempo Real. In: V Bienal de Pesquisa da FIOCRUZ, 2008, Rio de Janeiro. V Bienal de Pesquisa da FIOCRUZ, 2008. v. XX. p. 00.
-
VIEIRA, L. R. ; PITA-PEREIRA, D. DE ; BRITTO, C ; Alves CR . Detecção de infecção natural em flebótomos provenientes da região de Corumbá, Mato Grosso do Sul, por Leishmania, utilizando ensaios de PCR multiplex associado a hibridização não-radioativa e detecção por revelação enzimática. In: XVI Reunião Anual de Iniciação Científica da Fiocruz, 2008, Rio de Janeiro. XVI Reunião Anual de Iniciação Científica da Fiocruz, 2008. v. XX. p. 00.
-
CUERVO, P. ; JESUS, J. B. ; BRITTO, C. ; LIMA, L. M. ; SILVA-FILHO, F. C. ; GONZALEZ, L. J. ; BETANCOURT, L. ; GRIMALDI JR, G. ; Junqueira, M ; FERNANDES, O. ; CUPOLILLO, E. ; Domont, G . Leishmania braziliensis and Trichomonas vaginalis as models for systems biology studies of protozoan parasites. In: 2nd Congress of the Spanish Proteomics Society, 1st Meeting of the European Proteomics Association, 2007, Valencia. Proteómica, Boletín de la Sociedad Española de Proteómica. Valencia: SEProt - Sociedad Española de Proteómica, 2007. v. 1. p. 39-39.
-
CUERVO, P. ; Santos ALS ; Alves CR ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. ; CUPOLILLO, E. ; JESUS, J. B. . CELLULAR LOCALIZATION AND IDENTIFICATION OF GP63 HOMOLOGOUS METALLOPROTEASES IN LEISHMANIA (VIANNIA) BRAZILIENSIS STRAINS. In: XXXVI Annual Meeting of the Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology (SBBq), 2007, Salvador. XXXVI Annual Meeting Program 2007. São Paulo: X, 2007. v. 1. p. G66-G66.
-
JESUS, J. B. ; CUERVO, P. ; Junqueira, M ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. ; SOARES, M. J. ; CUPOLILLO, E. ; FERNANDES, O. ; Domont, G . A FURTHER PROTEOMIC STUDY ON THE EFFECT OF IRON IN THE HUMAN PATHOGEN TRICHOMONAS VAGINALIS. In: XXXVI Annual Meeting of the Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology (SBBq), 2007, Salvador. XXXVI Annual Meeting Program 2007. São Paulo: x, 2007. v. 1. p. W58-W58.
-
PITA-PEREIRA, D. DE ; CARDOSO, M. A. ; BRAZIL, R. P. ; LINS, R. ; Côrtes, L ; Alves CR ; BRITTO, C . DEVELOPMENT OF REAL-TIME PCR TO MONITOR PARASITE LOAD IN LUTZOMYIA SP AND ITS USE TO DISCRIMINATE BETWEEN LEISHMANIA (V) BRAZILIENSIS AND LEISHMANIA (L) CHAGASI INFECTIONS. In: XXXVI Annual Meeting of the Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology (SBBq), 2007, Salvador. XXXVI Annual Meeting Program 2007. São Paulo: X, 2007. v. 1. p. U9-U9.
-
JESUS, J. B. ; FERREIRA, M. A. ; CUERVO, P. ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. ; MEYER-FERNANDES, J. . The regulation by iron of the ecto-ATPase, ecto-phosphatase, and secreted phosphatase activities in pathogenic trichomonads. In: 15th Reunion on Peptides and Proteins, 2007, Dinard. 15th Reunion on Peptides and Proteins. YY: XX, 2007. v. X. p. 1-1.
-
JESUS, J. B. ; CUERVO, P. ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. ; MEYER-FERNANDES, J. ; Domont, G . Differential cysteine protease expression between Trichomonas vaginalis isolates exhibiting low and high virulence phenotypes. In: MPSA congress on proteomics: Proteomics in Cancer and Infectious Diseases, 2007, Varadero. MPSA congress on proteomics: Proteomics in Cancer and Infectious Diseases. ZZ: YY, 2007. v. X. p. 3-3.
-
SILVA, A. P. B. ; RODRIGUES, C. M. ; CUERVO, P. ; LEVY, C. D. M. ; BRITTO, C ; Alves CR ; JESUS, J. B. . Análise enzimográfica de larva de primeiro instar de Oxysarcodexia thornax (Diptera : Sarcophagidae).. In: XX Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2007, Recife. Revista de Patologia Tropical. XX: XX, 2007. v. 36. p. 483-484.
-
GAMA, B. E. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C. ; DANIEL-RIBEIRO, C. T. ; CRUZ, M. F. F. . Limites de detecção da PCR convencional (PCR-C) e da PCR em tempo real (PCR-TR) para a detecção dos parasitas da malária.. In: XLIII Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2007, XX. XLIII Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2007. v. 00. p. 1-1.
-
LIMA, M. ; O, S. ; DANDREA, P. S. ; JANSEN, A. M. ; BRITTO, C ; BOIA, M. ; C, C. ; TG, O. ; XAVIER, S. S. . Epidemiologia da doença de Chagas em áreas periurbanas de Jaguaruana, Ceará, Brasil: resultados preliminares. In: XLII Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2006, Teresina. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2006. v. 39. p. 197-197.
-
SILVA, R. I. ; KRUGER, W. V. ; FELICIO, D. ; VIDAL, L. ; CARDOSO, A. B. ; BRITTO, C ; LAGE, C. . Effects of antitumour chemotherapics on the expression of genes of the nucleotide excision repair system in Escherichia coli. In: XXXV Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Bioquímica e Biologia Molecular, 2006, Águas de Lindóia. Revista da Sociedade Brasileira de Bioquímica e Biologia Molecular, 2006.
-
GAMA, B. E. ; BRITTO, C ; CRUZ, M. F. F. . Desenvolvimento de reação de polimerização em cadeia em tempo real para a detecção dos parasitas da malária em indivíduos pauciparasitados: Comparação com o exame microscópico, optimal e PCR convencional. In: X Reunião Nacional de Pesquisa em Malária, 2006, São Luís - Maranhão. X.
-
ARAUJO, J. M. G. ; FILIPPIS, A. M. B. ; GUIMARAES, F. R. ; BRITTO, C ; NOGUEIRA, R. M. R. . PCR em tempo real (sistema TaqMan) aplicado a tecidos do SNC durante a epidemia de dengue em 2002 no Estado do Rio de Janeiro. In: XLI Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical e I Encontro de Medicina Tropical do Cone Sul, 2005, Florianópolis, SC. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2005. v. 38. p. 479-479.
-
FILIPPIS, A. M. B. ; BRITTO, C ; NOGUEIRA, R. M. R. . Detection of Denv-3 in CNS (Brain) by Real Time PCR using TaqMan assay. In: XVI Encontro Nacional de Virologia, 2005, Salvador. Virus Reviews & Research, 2005. v. 10. p. 102-102.
-
FILIPPIS, A. M. B. ; BRITTO, C ; NOGUEIRA, R. M. R. . Implementation of Real-Time RT-PCR (Taqman system) on tissues from fatal cases ocurred during dengue 3 epidemic in Rio de Janeiro. In: XVI Encontro Nacional de Virologia, 2005, Salvador. Virus Reviews & Research, 2005. v. 10. p. 146-146.
-
ARAUJO, J. M. G. ; NOGUEIRA, R. M. R. ; FILIPPIS, A. M. B. ; BRITTO, C . Implantação da técnica de PCR em tempo real (sistema TaqMan) para o diagnóstico de dengue. In: IX Jornada Científica de Pós-Graduação, 2005, Rio de Janeiro. Anais da IX Jornada Científica de Pós-Graduação da Fundação Oswaldo Cruz, 2005. p. 158-158.
-
PEREIRA, D. P. ; Alves CR ; SOUZA, M. B. ; BRAZIL, R. P. ; BERTHO, A. L. ; BARBOSA, A. ; BRITTO, C . Identification of naturally infected Lutzomyia sp with Leishmania (Viannia) braziliensis in Rio de Janeiro (Brazil) revealed by a PCR multiplex-linked non isotopic hybridization assay. In: VII Congreso Argentino de Protozoología y Enfermedades Parasitarias, 2005, Mendoza. Acta Bioquímica Clínica Latinoamericana. La Plata: Federación Bioquímica de la Provincia de Buenos Aires, 2005. p. 26-26.
-
da Silva, R.I. ; FA, L. ; FRAGOSO, S. P. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C ; SALMON, D. . Real-time PCR quantitative study of Trypanosoma cruzi colonization in Rhodnius prolixus vector. In: XXXII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2005, Caxambu, MG. XXI Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, XXXII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, International Symposium on Vesicle Trafficking in Parasitic Protozoa, 2005. p. 167-167.
-
ARAUJO, J. M. G. ; FILIPPIS, A. M. B. ; BRITTO, C ; NOGUEIRA, R. M. R. . Implantação da técnica de PCR em tempo real (sistema TaqMan) para o diagnóstico de dengue. In: VI Encontro do Instituto Adolfo Lutz - Saúde Pública, Pesquisa e Responsabilidade Social, 2005, São Paulo. Revista do Instituto Adolfo Lutz. São Paulo, 2005. v. 64. p. 206-206.
-
BOTELHO, L. ; BRITTO, C ; BARCELLOS, F. ; Mazzoni, C ; PEIXOTO, A. A. ; SALMON, D. . Genomic localization and evolution of DnaJ-like genes in different species of Trypanosomatids. In: XXI Annual Meeting on Basic Research in Chagas' Disease, 2004, Caxambu, MG. XX Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2004. p. 94-95.
-
JESUS, J. B. ; SABOIA-VAHIA, L. ; ROCHA-AZEVEDO, B. ; Alves CR ; BRITTO, C ; SILVA-FILHO, F. C. . Differential protease expression in extracts and extracellular secretions of Trichomonas vaginalis: a comparison between a fresh isolate and a long-term cultured parasite. In: XX Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2004, Caxambu, MG. XX Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2004. p. 143-143.
-
PEREIRA, D. P. ; BRITTO, C ; SOUZA, M. B. ; CARDOSO, M. A. ; PONTES, C. ; BERTHO, A. L. ; BARBOSA, A. ; Alves CR . Description of Lutzomyia intermedia and Lutzomyia migonei naturally infected by Leishmania braziliensis in Rio de Janeiro revealed by PCR assay. In: XX Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2004, Caxambu, MG. XX Annual Meeting of the Brazilian Society of Protozoology, 2004. p. 190-190.
-
BOTELHO, L. ; BRITTO, C ; BARCELLOS, F. ; Mazzoni, C ; PEIXOTO, A. A. ; SALMON, D. . Genomic localization and preliminary phylogenetic analysis of partial sequences of a DnaJ-like in various species of Trypanosomatids. In: 33ª Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Bioquímica e Biologia Molecular - SBBq, 2004, Caxambu, MG. Gravado em CD, 2004.
-
CRISTO, A. K. ; Frota, C ; Gonzalez LF ; Brandão, A ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Otimização da reação em cadeia da polimerase (PCR) como ferramenta molecular no diagnóstico da toxoplasmose. In: XL Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2004, Aracaju, SE. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2004. v. 37. p. 67-68.
-
LJF, M. ; PEREIRA, J. B. ; COSTA, J. ; BRITTO, C ; ZAUZA, P. L. ; NOGUEIRA, J. S. ; FREITAS, M. G. . Investigação sorológica da doença de Chagas em três áreas de colonização agrícola no estado de Roraima, Brasil.. In: XL Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2004, Aracaju, SE. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2004. v. 37. p. 157-157.
-
ARAUJO, J. M. G. ; FILIPPIS, A. M. B. ; SIMONE, T. S. ; GUIMARAES, F. R. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; COELHO, J. O. ; NICOLAI, C. ; SCHATZMAYR, H. G. ; NOGUEIRA, R. M. R. . Molecular detection of dengue virus type 3 in fatal cases by TaqMan real-time PCR assay. In: III Simpósio Internacional sobre arbovírus dos trópicos e febres hemorrágicas, 2004, Belém, PA. III Simpósio Internacional sobre arbovírus dos trópicos e febres hemorrágicas, 2004. p. 109-109.
-
ARAUJO, J. M. G. ; FILIPPIS, A. M. B. ; SIMONE, T. S. ; GUIMARAES, F. R. ; BRITTO, C ; CARDOSO, A. B. ; COELHO, J. M. ; NICOLAI, C. ; SCHATZMAYR, H. G. ; NOGUEIRA, R. M. R. . Real-time PCR in fatal cases of dengue infection. In: XV Encontro Nacional de Virologia, 2004, São Pedro, SP. Virus Reviews & Research, 2004. v. 09. p. 112-112.
-
CRISTO, A. K. ; Frota, C ; Gonzalez LF ; Brandão, A ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . A reação em cadeia da polimerase (PCR) como ferramenta molecular no diagnóstico da toxoplasmose. In: XL Congresso da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2004, Aracaju, SE. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 2004. v. 37. p. 62-63.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; CRISTO, A. K. ; Martinez AN ; PEREIRA, J. B. ; FERNANDES, O. ; Moraes MO . Aplicação do ensaio de PCR em tempo real ao diagnóstico de doenças infecciosas: Chagas, Hanseníase e Toxoplasmose. In: IV Bienal de Pesquisa, Fiocruz, 2004, Rio de Janeiro, RJ. Registrado em CD, 2004.
-
da Silva, R.I. ; FA, L. ; FRAGOSO, S. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C ; SALMON, D. . Estudo quantitativo da colonização do vetor Rhodnius prolixus pelo Trypanosoma cruzi por PCR em tempo real.. In: IV Bienal de Pesquisa da Fiocruz, 2004, Rio de Janeiro, RJ. Registrado em CD, 2004.
-
ARAUJO, J. M. G. ; FILIPPIS, A. M. B. ; SIMONE, T. S. ; GUIMARAES, F. R. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; SCHATZMAYR, H. G. ; NOGUEIRA, R. M. R. . PCR em tempo real (sistema TaqMan) aplicado a casos fatais de dengue no Estado do Rio de Janeiro. In: IV Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz, 2004, Rio de Janeiro. Registrado em CD, 2004.
-
Martinez AN ; Jardim, M ; SAMPAIO, E. ; SARNO, E. ; BRITTO, C ; Moraes MO . Comparação entre PCR convencional e PCR em tempo real para o diagnóstico de hanseníase. In: 50o Congresso Brasileiro de Genética, 2004, Florianópolis, SC. 50o Congresso Brasileiro de Genética, 2004. p. GM106.
-
JESUS, J. B. ; VANNIER-SANTOS, M. ; BRITTO, C ; GODEFROY, P. ; SILVA-FILHO, F. C. ; PINHEIRO, A. ; LOPES, A. ; MEYER-FERNANDES, J. . Implicação da variabilidade morfológica de populações de Trichomonas vaginalis na patogenicidade à células epiteliais. In: IV Bienal de Pesquisa da Fiocruz, 2004, Rio de Janeiro, RJ. Registrado em CD, 2004.
-
CRISTO, A. K. ; Frota, C ; Gonzalez LF ; Brandão, A ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Otimização da reação em cadeia da polimerase (PCR) como ferramenta molecular no diagnóstico da toxoplasmose. In: XVIII Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2003, Rio de Janeiro. Livro de Resumos do XVIII Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2003. p. 53-53.
-
JESUS, J. B. ; VANNIER-SANTOS, M. ; BRITTO, C ; GODEFROY, P. ; SILVA-FILHO, F. C. ; PINHEIRO, A. ; ROCHA-AZEVEDO, B. ; LOPES, A. ; MEYER-FERNANDES, J. . Trichomonas vaginalis virulence against epithelial cells and morphologic variability: comparison between a well-established strain and a fresh isolate.. In: XXX Annual Meeting on Basic Research in Chagas disease, 2003, Caxambu, MG. Rev. Inst. Med. Trop. São Paulo, 2003. v. 45. p. 96-96.
-
PEREIRA, D. P. ; SOUZA, M. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; PONTES, C. ; FEDER, F. ; Alves CR . A polymerase chain reaction multiplex assay in the diagnosis of naturally infected Lutzomyia phlebotomines by Leishmania spp.. In: XXX Annual Meeting on Basic Research in Chagas disease, 2003, Caxambu, MG. Rev. Inst. Med. Trop. São Paulo, 2003. v. 45. p. 168-168.
-
CRISTO, A. K. ; NOGUEIRA, A. ; Guedes AL ; Frota, C ; Gonzalez LF ; Brandão, A ; AMENDOEIRA, M. R. ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Lack of technical specificity in the molecular diagnosis of toxoplasmosis. In: XXX Annual Meeting on Basic Research in Chagas disease, 2003, Caxambu, MG. Rev. Inst. Med. Trop. São Paulo, 2003. v. 45. p. 169-169.
-
CARVALHO, C. M. E. ; ANDRADE, M. C. R. ; XAVIER, S. S. ; MANGIA, R. H. ; BRITTO, C ; JANSEN, A. ; FERNANDES, O. ; LANNES-VIEIRA, J. ; ALMEIDA, M. G. B. . Chronic Chagas' disease in rhesus monkeys (Macaca Mulatta): evaluation of parasitemia, serology, ECG, echocardiography and radiology. In: XVIII Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2003, Rio de Janeiro. XVIII Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2003. p. 273-273.
-
CRISTO, A. K. ; Brandão, A ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. ; Frota, C ; Gonzalez LF . Reação em cadeia da polimerase (PCR) como ferramenta molecular no diagnóstico da toxoplasmose.. In: 37o Congresso Brasileiro de Patologia Clínica e Medicina Laboratorial, 2003, Rio de Janeiro. 37o Congresso Brasileiro de Patologia Clínica e Medicina Laboratorial, 2003. p. 180-180.
-
Martinez AN ; BRITTO, C ; Moraes MO . Método universal de extração de ácidos nucleicos em diferentes amostras clínicas para detecção por PCR de Mycobacterium leprae AG 85A. In: 49o Congresso Nacional de Genética, 2003, Águas de Lindóia, SP. 49o Congresso Nacional de Genética, 2003. p. GM014.
-
PEREIRA, D. P. ; BRITTO, C ; Alves CR . Implementação da reação em cadeia da polimerase com revelação por ensaio enzimático na detecção de infecção de flebotomíneos vetores das leishmanioses. In: VIII Jornada Científica de Pós-Graduação da FIOCRUZ, 2003, Rio de Janeiro. VIII Jornada Científica de Pós-Graduação da FIOCRUZ, 2003.
-
BOTELHO, L. ; CARDOSO, A. ; MARQUES, P. ; PEREIRA, J. B. ; O, S. ; da Silva, R.I. ; LIMA, A. ; QUEIROZ, G. ; BRITTO, C . Regional performance of xenodiagnosis and PCR tests to evaluate Chagas disease parasitemia in patients living in distinct brazilian geographic areas. In: XXIX Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2002, Caxambu - MG. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo, 2002. v. 44. p. 56-56.
-
CARVALHO, C. M. E. ; BRITTO, C ; JMCO, C. ; LANNES-VIEIRA, J. ; BONECINI-ALMEIDA, M. G. . Persistence of Trypanosoma cruzi in tissues from chronically infected rhesus monkeys (Macaca mulatta). In: XXIX Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2002, Caxambu, MG. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo, 2002. v. 44. p. 55-55.
-
CARDOSO, M. A. ; PEREIRA, J. B. ; da Silva, R.I. ; LIMA, A. ; MARQUES, P. ; FERNANDES, O. ; BRITTO, C . Utilization of a PCR quantitative assay (TaqMan technology) in order to measure parasitemia level in chronic chagasic patients submitted to specific anti-Trypanosoma cruzi chemotherapy. In: III Bienal de Pesquisa da Fiocruz, 2002, Rio de janeiro. Anais da III Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz, 2002. p. 83-84.
-
BRITTO, C ; MARQUES, P. ; CARDOSO, M. A. ; BOTELHO, L. ; QUEIROZ, G. ; GOMES, Y. ; PEREIRA, J. B. . Aplicação da PCR, xenodiagnóstico e ELISA-recombinante na avaliação de pacientes chagásicos crônicos tratados com benznidazol. In: III Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz, 2002, Rio de Janeiro. III Bienal de Pesquisa, 2002. p. 82-83.
-
CRISTO, A. K. ; AMENDOEIRA, M. R. ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Polymerase chain reaction as a molecular tool to detect Toxoplasma gondii on peripheral blood. In: XV Congresso Latino-Americano de Parasitologia, 2001, Sâo Paulo. Jornal Brasileiro de Patologia. Rio de Janeiro: Sociedade Brasileira de Patologia Clínica, 2001. v. 37. p. 114-114.
-
GUTIERREZ, R. ; A, V. ; KP, L. ; CM, S. ; VM, A. ; BRITTO, C ; FERNANDES, O. . Epidemiological aspects of Chagas disease in Santander (Colombia). In: XXVIII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2001, Caxambu, MG. XXVIII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2001. p. 167-167.
-
BOTELHO, L. ; MARQUES, P. ; PEREIRA, J. B. ; GOMES, Y. ; ZAUZA, P. ; CARDOSO, M. A. ; FERNANDES, O. ; OLIVEIRA, P. V. ; BRITTO, C . Short-term evaluation of PCR, xenodiagnosis and recombinant ELISA in chronic chagasic patients treated with benznidazole. In: XXVIII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2001, Caxambu, MG. XXVIII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2001. p. 94-94.
-
LEGEY, A. P. ; LIMA, A. ; MARQUES, P. ; VITORINO, M. ; BOTELHO, L. ; MF, B. ; JANSEN, A. ; BRITTO, C . Didelphid opossums and Trypanosoma cruzi: control and elimination of blood TC1 and TC2 genotypes. In: XXVIII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2001, Caxambu, MG. XXVIII Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2001. p. 163-163.
-
BOTELHO, L. P. C. B. ; SALMON, D. ; BRITTO, C . Mapeamento de uma região de organização gênica conservada entre diferentes membros da família de Tripanosomatídeos e suas implicações evolutivas. In: VII Jornada Científica de Pós-Graduação da FIOCRUZ, 2001, Rio de Janeiro. Anais da VII Jornada Científica de Pós-graduação da Fundação Oswaldo Cruz, 2001. p. 84-84.
-
CRISTO, A. K. ; FERNANDES, O. ; BRITTO, C . Método da reação em cadeia da polimerase (PCR) como ferramenta molecular para detecção de Toxoplasma gondii em sangue periférico. In: VII Jornada Científica de Pós-Graduação da FIOCRUZ, 2001, Rio de Janeiro. Anais da Vii Jornada Científica de Pós-graduação da Fundação Oswaldo Cruz, 2001. p. 164-164.
-
NOREK, A. ; JANSEN, A. M. ; BRITTO, C . Diagnóstico e tipagem molecular de T. evansi in situ: uma nova abordagem. In: Vii Jornada Científica da Pós-graduação da FIOCRUZ, 2001, Rio de Janeiro. Anais da VII Jornada Científica de Pós-graduação da Fundação Oswaldo Cruz, 2001. p. 68-68.
-
TERRA, M. A. B. L. ; ARAÚJO, A. J. G. ; BRITTO, C ; BASTOS, O. M. P. . Paleoparasitologia da toxoplasmose: Estudo experimental com aplicação de técnicas de biologia molecular em tecidos mumificados. In: Vii Jornada Científica de Pós-graduação da FIOCRUZ, 2001, Rio de Janeiro. Anais da VII Jornada Científica de Pós-graduação da Fundação Oswaldo Cruz, 2001. p. 188-188.
-
MARIN, R. G. ; FERNANDES, O. ; BRITTO, C . Aspectos epidemiológicos da doença de Chagas em Santander (Colômbia). In: VII Jornada Científica de Pós-graduação da FIOCRUZ, 2001, Rio de Janeiro. Anais da VII Jornada Científica de Pós-graduação da Fundação Oswaldo Cruz, 2001. p. 92-92.
-
MARQUES, P. ; SILVA, R. ; PEREIRA, J. B. ; CARDOSO, M. A. ; NERY, C. ; FERNANDES, O. ; BOTELHO, L. ; BRITTO, C . Performance of the PCR-based diagnosis for Chagas disease in patients living in João Costa, Piaui State, Brazil.. In: XXVII Anual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 2000, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro: Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 2000. v. 95. p. 157-158.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; FERREIRA, L. F. ; MOREL, C. ; ARAUJO, A. ; SILVEIRA, C. ; MACÊDO, V. ; MARQUES, P. ; NERY, C. ; FERNANDES, O. . Approaches on PCR methodology: molecular paleoparasitology of Chagas disease and evaluation of parasitological cure aftyer specific treatment of chagasic patients. In: II Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz, 2000, Rio de Janeiro. II Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro, 2000. p. 207-207.
-
BRITTO, C ; MACÊDO, V. ; SILVEIRA, C. ; CARDOSO, M. A. ; MARQUES, P. ; FERNANDES, O. . Potencial de aplicação da técnica de PCR na determinação de cura parasitológica em pacientes chagásicos crônicos submetidos a quimioterapia específica. In: XV Reunião Anual de Pesquisa Aplicada em Doença de Chagas, 1999, Uberaba. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, 1999. v. 32. p. 77-78.
-
BRITTO, C ; FERNANDES, O. ; CARDOSO, M. A. ; ARAUJO, A. ; MOREL, C. ; FERREIRA, L. F. . Paleoparasitology of Chagas Disease: isolation of Trypanosoma cruzi DNA in 2,000-year-old mummified human tissues from Chile. In: XXVI Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 1999, Caxambu. Memorias do Instituto Oswaldo cruz. Rio de Janeiro: Fiocruz, 1999. v. 94. p. 67-67.
-
FERNANDES, O. ; MACÊDO, V. ; CARDOSO, M. A. ; MARQUES, P. ; SILVEIRA, C. ; MOREL, C. ; BRITTO, C . Polymerase Chain Reaction as a laboratorial tool to evaluate parasitological cure in chronic chagasic patients submitted to specific therapy. In: XXVI Annual Meeting on Basic Research in Chagas Disease, 1999, Caxambu, MG. Memórias do instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro: Fiocruz, 1999. v. 94. p. 147-147.
-
MANGIA, R. H. ; BONECINI, A. ; LANNES, V. ; CARDOSO, M. A. ; BRITTO, C ; JANSEN, A. ; FERNANDES, O. . Experimental infection of Old World monkeys with Trypanosoma cruzi lineage 2: re- evaluation after 14-17 years. In: XXV Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1998, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: Fiocruz, 1998. v. 93. p. 160-160.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; MARQUES, P. ; RUSSELL, N. N. ; FERNANDES, O. ; MOREL, C. . Tecnologia TaqMan - Uso de sondas fluorogênicas para a quantificação em tempo real pela PCR e sua aplicação no monitoramento de tratamento específico anti- Trypanosoma cruzi. In: I Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz, 1998, Rio de Janeiro. I Bienal de Pesquisa da Fundação Oswaldo Cruz, 1998. p. 77-77.
-
PINTO, A. S. ; LANA, M. ; BRITTO, C ; BASTRENTA, B. ; TIBAYRENC, M. . Experimental Trypanosoma cruzi Clonal Genotypes Mixed Infection in Triatoma infestans: Direct Identification by Hybridization With PCR Products Using Molecular Probes. In: XXIV Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1997, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: Fiocruz, 1997. v. 92. p. 194-194.
-
RAVEL, C. ; WINCKER, P. ; BRITTO, C ; BLAINEAU, C. ; PAGES, M. ; BASTIEN, P. . Karyotype and Chromosome Mapping in Leishmania. In: First World Congress on Leishmaniosis, 1997, Istambul. Acta Parasitologica Turcica. Istambul: M. Ali Ozcel, 1997. v. 21. p. 58-58.
-
MOREL, C. M. ; BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; SANTORO, A. ; WINCKER, P. . PCR-Based Studies of Chronic Chagas'Disease: From Myth to Reality.. In: XXII Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1995, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: Fiocruz, 1995. v. 90. p. 35-35.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; RAVEL, C. ; SANTORO, A. ; PEREIRA, J. B. ; COURA, J. R. ; MOREL, C. M. ; WINCKER, P. . Trypanosoma cruzi: Parasite Detection and Strain Discrimination in Chronic Chagasic Patients from North-Eastern Brazil Using PCR Amplification of Kinetoplast DNA and Non- Radioactive Hybridization. In: XXII Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1995, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: Fiocruz, 1995. v. 90. p. 122.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; OELEMANN, W. ; MOREL, C. ; WINCKER, P. . Utilização da Técnica de Amplificação por PCR no Diagnóstico da Doença de Chagas Crônica. In: 40 Congresso Nacional de Genética, 1994, Caxambu, MG. Brazilian Journal of Genetics, 1994. v. 17. p. 187-187.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; SANTORO, A. ; HASSLOCHER, A. M. ; OELEMANN, W. ; PIRMEZ, C. ; MOREL, C. M. ; WINCKER, P. . Polymerase Chain Reaction Detection of Trypanosoma cruzi in Human Blood Samples as a Tool for Diagnosis and Treatment Evaluation. In: XXI Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1994, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: Fiocruz, 1994. v. 89. p. 120-120.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; WINCKER, P. ; MOREL, C. M. . A simple Protocol for the Physical Cleavage of Trypanosoma cruzi Kinetoplas DNA Present in Blood Samples and its use in PCR Amplification: Diagnosis of Chronic Chagas 'Disease.. In: XXII Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Bioquímica e Biologia Molecular, 1993, Caxambu, RJ. Biologia Molecular de Eucariotos Superiores, Programa e Resumos da XXII Reunião Anual da Soc. Bras. de Bioq. e Biol. Mol., 1993. p. 24-24.
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; OELEMANN, W. ; MOREL, C. ; WINCKER, P. . Detection of Trypanosoma cruzi through PCR amplification of kDNA Sequences in Chronic Chagasic Patients. In: XX Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1993, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: Fiocruz, 1993. v. 88. p. 165-165.
-
BRITTO, C ; FRAGOSO, S. ; DEGRAVE, W. ; CARDOSO, A. B. ; MOREL, C. M. . The Complete Nucleotide Sequence of Three Kinetoplast DNA Minicircles from Trypanosoma cruzi. In: XIII Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1986, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: FIOCRUZ, 1986. v. 81. p. 100-100.
-
DEGRAVE, W. ; FRAGOSO, S. ; BRITTO, C ; MOREL, C. M. . Minicircle Sequence: Not that Random after all?. In: XIII Reunião Anual de Pesquisa Básica em Doença de Chagas, 1986, Caxambu, MG. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. RJ: FIOCRUZ, 1986. v. 81. p. 99-99.
-
BRITTO, CONSTANCA . PCR como indicador de resposta terapêutica na doença de Chagas: fato ou fake?. 2023. (Apresentação de Trabalho/Congresso).
-
BRITTO, C ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ . Da exploração da variabilidade genética de Trypanosoma cruzi à produção do kit de diagnóstico: uma longa trajetória. 2022. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
CONSTANÇA BRITTO . Diagnóstico Molecular da Doença de Chagas: da Pesquisa Básica ao Desenvolvimento Tecnológico. 2022. (Apresentação de Trabalho/Seminário).
-
BRITTO, C . Diagnóstico molecular de Trypanosoma cruzi na Doença de Chagas. 2022. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).
-
BRITTO, C. . A Doença de Chagas: Panorama Atual. 2013. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C. . Estratégias baseadas em PCR como marcadores substitutos de resposta terapêutica na doença de Chagas. 2013. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).
-
BRITTO, C . Actualización en Enfermedad de Chagas. 2013. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . PCR para avaliação da eficácia terapêutica na doença de Chagas: Aplicação ao Estudo BENEFIT (Benznidazole Evaluation for Interrupting Trypanosomiasis). 2012. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C ; Alves CR ; D'Avila-Levy CM ; MOREIRA, O. C. ; JESUS, J. B. . I Simpósio de Pesquisa e Inovação do Instituto Oswaldo Cruz. 2010. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).
-
BRITTO, C . MESA REDONDA - Diagnóstico Parasitológico, Imunológico e Molecular de Doenças Parasitárias/ Diagnóstico Etiológico da doença de Chagas. 2010. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C.C. ; GOMES, Y. . Avanços na rede Diagnóstico. 2010. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Mesa Redonda: Avanços biotecnológicos no diagnóstico da doença de Chagas, Palestra: Diagnóstico molecular. 2009. (Apresentação de Trabalho/Congresso).
-
BRITTO, C. . Mesa Redonda: Use of Polymerase Chain Reaction (PCR) to Establish Drug Efficacy in Chagas Disease. 2009. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).
-
BRITTO, C ; GOMES, Y. ; KRIEGER, M. . Apresentação da área temática em diagnóstico da doença de Chagas. 2009. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).
-
BRITTO, C ; CARDOSO, M. A. ; MOREIRA, O. C. . Plataforma de PCR em Tempo Real. 2009. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Revisão crítica sobre o diagnóstico etiológico da doença de Chagas. 2009. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Round Table BENEFIT study: Metodologia y logistica para el objetivo que involucra PCR.. 2008. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Diagnóstico Molecular de Doenças Infecto-parasitárias. 2008. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Diagnóstico da doença de Chagas. 2008. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C ; GOMES, Y. ; KRIEGER, M. . Área Temática de Diagnóstico da Doença de Chagas. 2008. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).
-
BRITTO, C . Estudio BENEFIT: Metodologia y logistica para el objectivo que involucra PCR. 2008. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
ZANELLA, L. M. ; CARDOSO, M. A. ; LEVY, C. M. D. ; CRUZ, O. M. ; BRITTO, C . Desenvolvimento de um ensaio de PCR em tempo real para a medida da carga parasitária em indivíduos infectados pelo T. cruzi. 2008. (Apresentação de Trabalho/Congresso).
-
BRITTO, C . Use of PCR to establish drug efficacy on Chagas disease: value and limitations. 2007. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . PCR aplicada no contexto do estudo BENEFIT. 2007. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Use of PCR to assess drug efficacy on Chagas disease: value and limitation. 2007. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C ; CRISTO, A. K. ; FERNANDES, O. . Diagnóstico molecular da toxoplasmose - Mesa redonda. 2006. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Mesa redonda: Entendendo novas metodologias em biologia molecular - PCR em tempo real. 2006. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
PEREIRA, D. P. ; Alves CR ; BRITTO, C . Identification of naturally infected Lutzomyia sp. with Leishmania (Viannia) braziliensis in Rio de Janeiro (Brazil) revealed by a PCR multiplex-linked non isotopic hybridization assay. 2005. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C ; PEREIRA, J. B. ; FERNANDES, O. . Molecular diagnosis of chronic Chagas disease - The state of art. 2005. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).
-
BRITTO, C . Mesa redonda Diagnosticando parasitoses teciduais - Diagnóstico da doença de Chagas. 2003. (Apresentação de Trabalho/Congresso).
-
BRITTO, C . I Seminário de Doenças Tropicais, palestra sobre Doença de Chagas. 2003. (Apresentação de Trabalho/Seminário).
-
MARIN-NETO, J. A. ; et al. ; DE PAOLI DE CARVALHO BRITTO CF ; et al., . Guideline of the Brazilian Society of Cardiology on Diagnosis and Treatment of Patients with ChagasDisease Cardiomyopathy 2022 (Preprint).
-
SOUZA, D. R. ; BRITTO, C. ; PITA-PEREIRA, D. DE . DIAGNÓSTICO DE INFECÇÃO NATURAL POR LEISHMANIA INFANTUM E LEISHMANIA (VIANNIA) BRAZILIENSIS EM FLEBOTOMINEOS COLETADOS EM ÁREA URBANA DO MUNICÍPIO DE BARRA DO PIRAÍ, ESTADO DO RIO DE JANEIRO. Barra do Piraí - RJ: Transparência Portal Barra do Piraí, 2022 (Documento apresentado para a Secretaria Municipal de Saúde, Barra do Piraí).
-
BRITTO, C. ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ . Diagnóstico molecular da doença de Chagas. Rio de Janeiro: Fiocruz, 2017 (Texto para mídia digital).
-
BRITTO, C . O DNA do cinetoplasto (kDNA) de Trypanosoma cruzi e aplicações. Rio de Janeiro: Portal de doença de Chagas, Programa Integrado em Doença de Chagas da FIOCRUZ, 2007 (Texto para mídia digital).
-
BRITTO, C . Diagnóstico Molecular da Doença de Chagas. Rio de Janeiro: Portal de doença de Chagas - Programa Integrado em Doença de Chagas da FIOCRUZ, 2007 (Texto para mídia digital).
-
BRITTO, C . Consenso Brasileiro em Doença de Chagas - Diagnóstico laboratorial da infecção pelo Trypanosoma cruzi. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, Vol. 38, Suplemento III, 2005 (Documento apresentado para a Secretaria de Vigilância em Saúde, Ministério da Saúde).
-
BRITTO, C . Diagnóstico molecular da doença de Chagas pela reação em cadeia da polimerase. Buenos Aires: Sociedad Iberoamericana de Información Científica - SIIC, 2002 (Texto para mídia digital).
Outras produções
BRITTO, CONSTANÇA . AVALIAÇÃO DE PROJETOS DE PESQUISA E DE ORIENTADORES DO PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOLOGIA PARASITÁRIA. 2013.
BRITTO, C . Comissão de Avaliação de resumos da 65o Reunião Anual da SBPC. 2013.
BRITTO, C . Comissão do Programa Institucional de Bolsas de Iniciação Tecnológica do CNPq/FIOCRUZ. 2013.
BRITTO, C . Comitê Institucional do PIBIT 2011. 2011.
SCHIJMAN, A. ; BRITTO, C.C. . Evaluación y validación de la PCR Real Time cuantitativa para evaluar los resultados del tratamiento de la Enfermedad de Chagas. 2011.
BRITTO, C . Avaliação de projetos de pesquisa da UFRN. 2011.
SOSA-ESTANI, S. ; SCHIJMAN, A. ; BRITTO, C ; MARTINS, O. ; CHAVES, G. ; RIBEIRO, I. . Reuniâo OPAS/TDR - Definição de termos de referência e provas de laboratório para diagnóstico e/ou seguimento da doença de Chagas. 2010.
HASSLOCHER, A. M. ; BRITTO, C . Comite Técnico Assessor em Doença de Chagas. 2010.
LUQUETTI, A. ; GALVAO, L. ; GOMES, Y. ; Britto, Constança . Grupo Técnico Consenso Chagas. 2010.
BRITTO, C . Diagnóstico molecular da doença de Chagas e esforço internacional para desenvolvimento de novos medicamentos, OMS. 2007.
BRITTO, C . Estudo BENEFIT, estudo clínico randomizado controlado por placebo, do tratamento com benzonidazol, em pacientes com cardiopatia chagásica crônica. 2007.
BRITTO, C . Fundação de Apoio ao Desenvolvimento do Ensino, Ciência e Tecnologia do Estado de Mato Grosso do Sul/ Fundect -MS. 2007.
BRITTO, C . CNPq - Edital 35/2005. 2005.
BRITTO, C . CNPq Edital 19/2004 - Universal. 2005.
BRITTO, C . Edital MCT/CNPq/FAPEAM. 2005.
BRITTO, C . Comissão de Avaliação de Desempenho dos servidores do Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular. 2001.
BRITTO, C. ; MOREIRA, O. . Kit NAT-Chagas qPCR para o diagnóstico molecular da doença de Chagas. 2022.
MOREIRA, OTACILIO CRUZ ; BRITTO, CONSTANÇA DE PAOLI ; COSTA, A. D. T. ; NASCIMENTO, L. O. R. ; MORELLO, L. G. ; MARCHINI, F. K. ; KRIEGER, M. A. . Kit NAT Chagas (Nucleic Acid Test for Chagas Disease). 2022.
BRITTO, C ; WINCKER, P. ; CARDOSO, M. A. ; MOREL, C. M. . Reação em cadeia da polimerase(PCR) para o diagnóstico da infecção crônica pelo Trypanosoma cruzi. 1995.
BRITTO, CC . Comitê de análise de resumos para a 63 Reunião Anual da SBPC. 2011.
BRITTO, C . CNPq - Participação em evento. 2010.
BRITTO, C . FACEPE. 2010.
BRITTO, C . FAPEMIG. 2010.
BRITTO, C . FAPERJ. 2010.
CRUZ, O. M. ; RAMIREZ, J. D. ; VELAZQUEZ, E. ; MELO, M. F. A. D. ; FERREIRA, C. L. ; BRITTO, C . Establishment of a consensus protocol for Quantitative Real-Time PCR (qPCR) to the BENEFIT study. 2010.
BRITTO, C . Parecerista de resumos submetidos ao IX Congresso Brasileiro de Saúde Coletiva. 2009.
BRITTO, C . Infecção chagásica crônica: Abordagens moleculares na avaliação do controle de cura. 2008.
BRITTO, C. . Pós graduação em Biologia Parasitária (IOC). 2008.
BRITTO, C . CNPq Edital Universal. 2008.
BRITTO, C . CNPq - Produtividade em Pesquisa - PQ - 2007. 2007.
BRITTO, C . CNPq - Bolsa no País/ Pós Doutorado Júnior. 2006.
BRITTO, C . Edital MCT/CNPq 02/2006 - Universal. 2006.
BRITTO, C . Comissão de Avaliação do Edital para Pesquisador Visitante - FIOCRUZ/CNPq. 2006.
BRITTO, C ; LUQUETTI, A. ; FERNANDES, O. ; LAGES, E. ; CHIARI, E. ; GALVAO, L. ; GOMES, Y. . Diagnóstico Laboratorial da Infecção pelo Trypanosoma cruzi. 2005.
BRITTO, C . Avaliação de Projetos do Curso de Pós-graduação em Biologia Parasitária - Instituto Oswaldo Cruz/FIOCRUZ. 2005.
BRITTO, C . Consenso Brasileiro em Doença de Chagas. 2005.
CONSTANÇA BRITTO ; MOREIRA, OTACILIO CRUZ . A Fundação Oswaldo Cruz registrou o primeiro kit de diagnóstico molecular para a doença de Chagas. 2022. (Programa de rádio ou TV/Entrevista).
BOHORQUEZ, L. ; KHAN, S. ; GRANTZ, K. ; GIRDWOOD, S. ; RODRIGUEZ, M. ; SCHIJMAN, A. ; MUNOZ, A. ; PINAZO, M. J. ; KHEIR, N. E. ; CAICEDO, A. ; HERAZO, R. ; FORSYTH, C. ; PEREZ, F. ; COTO, H. ; JERCIC, M. I. ; NOYA, B. A. ; HASSLOCHER, A. ; BALDERRAMA, A. G. ; ARIAS, A. R. ; CONSTANÇA BRITTO ; et.al . MEETING ON DIAGNOSTIC EVALUATION AND ECONOMIC IMPACT ANALYSIS OF NEW DIAGNOSTIC METHODS FOR CHAGAS DISEASE. 2024. (Relatório técnico apresentado para OPAS).
BRITTO, C. . Seminário Discente do Programa de Biologia Parasitária do Programa de Pós-Graduação Stricto Sensu. 2010. (Curso de curta duração ministrado/Outra).
BRITTO, C . Fundamentos de Biologia Molecular: DNA-Estrutura e Replicação; PCR e suas aplicações. 2009. (Curso de curta duração ministrado/Outra).
BRITTO, C ; Alves CR ; LEVY, C. M. D. ; De Jesus, Jose Batista . Recredenciamento dos laboratórios do Instituto Oswaldo Cruz. 2008. (Relatório de pesquisa).
BRITTO, C . Estudo de avaliação da infecção natural e competência vetorial da fauna flebotomínea em áreas de ocorrência de leishmanioses no Estado do Rio de Janeiro por meio de estratégias moleculares de PCR convencional e PCR em Tempo Real e ensaios bioquímicos de interação parasito-vetor. 2008. (Projeto aprovado para financiamento - Edital MCT/CNPq Nº 014/2008 ? Universal).
BRITTO, C . Estudo BENEFIT - Avaliação da eficácia do benzonidazol em pacientes com cardiomiopatia chagásica. 2007. (Projeto aprovado para financiamento).
BRITTO, C ; HASSLOCHER, A. M. ; SOSA-ESTANI, S. . Avaliação da aplicação da medida de carga parasitária, através de métodos moleculares, em indivíduos infectados com Trypanosoma cruzi, de diferentes áreas da América do Sul, e sua associação com a gravidade da doença de Chagas. 2007. (Projeto aprovado para financiamento).
Projetos de pesquisa
-
2016 - Atual
Avaliação da importância epidemiológica de espécies do subcomplexo Triatoma rubrovaria a partir da análise de competência vetorial e hábito alimentar, Descrição: A doença de Chagas (DC) é causada pelo protozoário Trypanosoma cruzi e acomete cerca de seis milhões de pessoas na América Latina. Como não existe uma vacina ou um tratamento eficaz para a DC, o método de controle se concentra na erradicação dos vetores, os triatomíneos, de comprovada adaptação aos domicílios humanos. Apesar da eficiência relativa dos programas de combate aos triatomíneos, o risco de transmissão do T. cruzi persiste devido a fatores como devastação ambiental, baixas condições de vida da população, presença de reservatórios infectados pelo T. cruzi e a re-infestação por triatomíneos silvestres autóctones de domicílios previamente tratados com inseticidas. Investigações sobre a biologia e o comportamento de vetores são importantes para o maior entendimento da interação hospedeiro-vetor e dos riscos epidemiológicos de determinada espécie, permitindo o desenvolvimento de estratégias mais eficazes de controle vetorial. Embora as espécies do subcomplexo T. rubrovaria sejam silvestres, a invasão de Triatoma rubrovaria em habitações humanas têm sido observada frequentemente. Desta forma, o presente projeto se propõe avaliar duas espécies filogeneticamente muito próximas deste subcomplexo (T. rubrovaria e T. carcavalloi), com ocorrência no estado do Rio Grande do Sul, bioma Pampa. Pretende-se analisar o potencial vetorial de T. rubrovaria (espécie sinantrópica) e de T. carcavalloi (espécie silvestre) na dinâmica de transmissão de T. cruzi, a partir da identificação dos principais aspectos relacionados à capacidade vetorial, tais como (a) hábitos alimentares, (b) taxa de infecção, (c) caracterização molecular das linhagens genéticas do parasito, seguido da (d) avaliação experimental dos parâmetros bionômicos destas espécies infectadas por duas cepas distintas de T. cruzi (Dm28c e Y). A partir desses dados será possível contribuir para uma maior compreensão da dinâmica de transmissão de T. cruzi por essas duas espécies de triatomíneos nas áreas estudadas, buscando auxiliar na elaboração de planos estratégicos para controles mais adequados e eficazes da doença de Chagas no país.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Catarina Macedo Lopes - Integrante / Jacenir Reis dos Santos Mallet - Integrante / Márcio Pavan - Integrante.
-
2011 - Atual
Leishmanioses em áreas de extensa biodiversidade: ecoepidemiologia, caracterização molecular dos parasitos e inferências sobre as taxas de infecção natural e fontes alimentares da fauna flebotomínica, Descrição: As Leishmanioses apresentam uma grande variedade ecoepidemiológica, com ampla distribuição geográfica e diversidade clínica. Nos últimos anos, estas doenças vêm apresentando mudanças em seus ciclos de transmissão devido a diversos fatores, tendo o inseto vetor, fêmeas de flebotomíneos e as variáveis ambientais, importantes papéis neste contexto. A distribuição geográfica das leishmanioses está associada à presença dos flebotomíneos e uma série de características biológicas inerentes ao próprio vetor influencia sua capacidade vetorial. O conhecimento das espécies e da taxa de infecção dos insetos vetores nas suas áreas de ocorrência, assim como a identificação correta da espécie de Leishmania encontrada nos vetores e em humanos, aliados ao estudo de hábito alimentar destes vetores, o que permite uma associação sobre potenciais reservatórios, são importantes para a compreensão da ecoepidemiologia das leishmanioses. No Brasil, a Leishmaniose Tegumentar (LT) é uma doença expressiva, devido em parte à grande abundância e diversidade de flebotomíneos, vetores das várias espécies de Leishmania que ocorrem no país. A LT encontra-se distribuída em todos os estados, sugerindo a adaptação dos parasitos e seus vetores a ambientes modificados pelo homem. Cerca de 70% dos casos estão relacionados aos estados que fazem parte da Amazônia brasileira. Visamos estudar áreas de extensa biodiversidade na região Amazônica Brasileira: o Parque Nacional do Jaú (PNJ), no estado do Amazonas e os municípios de Rio Branco e Brasiléia, no estado do Acre. O PNJ apresenta características epidemiológicas que contribuem para a manutenção do ciclo da LT e até o momento conta com apenas uma única publicação sobre uma nova espécie de flebotomíneo identificada na região. Ressalta-se que o Amazonas corresponde ao maior estado da região Norte do Brasil, aonde a incidência de LT vem aumentando significativamente, além de ser o estado que apresenta a maior concentração de vetores dos agentes etiológicos de LT no Brasil. Algumas características das populações ribeirinhas (construção de casas contíguas à mata, crescimento de comunidades, pequenos desmatamentos e deslocamentos dos moradores no interior da floresta), podem estar contribuindo para ocasionais surtos de LT na área do PNJ. Há alguns anos nosso grupo vem estudando a fauna de flebotomíneos de dois municípios do Acre: Rio Branco e Brasiléia, onde a LT é considerada endêmica, com altas taxas de incidência e prevalência, e até o momento sem registros da doença visceral. Os poucos estudos realizados no Acre ainda são incipientes em relação à ecologia, fontes alimentares de flebotomíneos e o ciclo de transmissão de Leishmania spp. De modo geral, a ocorrência de surtos de leishmanioses tem conhecida relação com impactos ambientais de diversas origens, portanto há que se trabalhar com prováveis fatores determinantes destes processos, que permitam discutir diferentes cenários epidemiológicos. Neste projeto está sendo proposto um conjunto de metodologias amplamente aplicadas e validadas para o estudo da fauna flebotomínica, diagnóstico de infecção natural e pesquisa de fonte alimentar destes insetos, e acoplada a este conjunto, a análise espacial e modelagem matemática, correlacionando os resultados obtidos nas diferentes áreas de estudo com os dados ambientais em um Sistema de Informação Geográfica (SIG). Assim, esperamos produzir novos conhecimentos, não apenas para melhor compreender a ecoepidemiologia e o processo de espacialização da LT nas áreas selecionadas, de ampla biodiversidade, como também contribuir com elementos que possibilitem nortear e aperfeiçoar as diretrizes voltadas para as políticas públicas de vigilância e controle deste agravo.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Daniela de Pita Pereira - Integrante / Reginaldo Peçanha Brazil - Integrante / Mauricio Luiz Vilela - Integrante / Jacenir Reis dos Santos Mallet - Integrante / Andressa Alencastre Fuzari Rodrigues - Integrante / Israel de Souza Pinto - Integrante / Elizabeth Rangel - Integrante / Thiago Vasconcelos dos Santos - Integrante / Bruno Moreira de Carvalho - Integrante / Thais de Araújo Pereira - Integrante / Natalia Beline da Rocha - Integrante / Sandylere Moreira Baia Gomes - Integrante / Regis Bernardo Brandim Gomes - Integrante / Filipe Anibal Carvalho Costa - Integrante / Simone Ladeia - Integrante., Financiador(es): Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Bolsa.
-
2010 - Atual
Análise composicional das regiões 5' UTR dos genes de trans-sialidase de Trypanosoma cruzi: estudos de tradução in vitro e busca de novos marcadores para tipagem de cepas e isolados do parasito, Descrição: O mapeamento das 5'UTR da família de trans-sialidases identificadas no genoma de T. cruzi CL Brener detectou a presença de sítios adicionais de trans-splicing, acarretando em mRNAs que diferem somente pelo tamanho das 5'UTRs. Investigaremos o potencial destas regiões como marcador molecular para tipagem de cepas e isolados de T. cruzi e se os sítios adicionais de trans-splicing na 5'UTR de trans-sialidases exercem efeito na tradução do respectivo RNAm.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Adeilton Brandão - Integrante / Claudia D'Avila Masini Levy - Integrante / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante.
-
2009 - 2011
Programa Integrado de Doença de Chagas - PIDC (FIOCRUZ), Descrição: O PIDC visa articular, em redes temáticas, a cooperação entre pesquisadores, estimulando e consolidando seu potencial competitivo (âmbito nacional e internacional) e a excelência da pesquisa institucional relacionada aos atuais desafios da doença de Chagas, uma negligenciada parasitose que ainda representa um importante problema de saúde pública no Brasil e em outros países da América do Sul. O presente projeto tem por objetivo geral a gestão da informação e da comunicação como parte do Programa Integrado de Doença de Chagas da Fiocruz, estimulando assim a popularização da ciência, em especial, do conhecimento sobre a doença de Chagas, envolvendo suas diversas áreas de conhecimento (tais como sua ecologia e formas de transmissão, seus vetores e agente causal, entre outras), além de promover a melhoria da educação científica, através da produção de materiais didáticos e informativos sobre esta parasitose (através de mídias diversas).. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Joseli Lannes-Vieira - Integrante / Maria Nazaré Soeiro - Integrante / Andreia Pires Dantas - Integrante / Marcelo Lorenzo - Integrante., Financiador(es): Fundação Oswaldo Cruz - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 12
-
2009 - Atual
Doença de Chagas: Avaliação de marcadores moleculares para o monitoramento da carga parasitária e genotipagem de Trypanosoma cruzi e aplicação na investigação de eficácia terapêutica de indivíduos infectados na fase crônica da doença, Descrição: A tripanosomíase americana ou doença de Chagas (DC) afeta cerca de 8 milhões de indivíduos na América do Sul, sendo que 20 a 30% eventualmente desenvolverão cardiomiopatia chagásica crônica, a manifestação mais severa da doença em humanos (WHO 2007; RASSI et al., 2010). Seu agente etiológico, Trypanosoma cruzi, apresenta uma grande diversidade genética, composto por subpopulações ou Discrete Typing Units (DTUs) que circulam nos ambientes silvestres e domésticos (DE FREITAS et al., 2006; ZINGALES et al., 2009; 2012). Estudos vêm sendo conduzidos buscando um maior entendimento da estrutura populacional deste parasito e a associação entre distribuição geográfica dos principais genótipos (DTUs), ciclos de transmissão e doença (MACEDO et al., 2004; MILES et al., 2009; STURM and CAMPBELL, 2010). Tal variabilidade genética do parasito, associada aos fatores imunogenéticos do hospedeiro e características ambientais, poderia refletir no largo espectro de manifestações clínicas da DC, parasitemia e respostas ao tratamento (MACEDO et al., 2004). Um século após sua descoberta a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como conseqüência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitiria descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Em paralelo, estaremos identificando marcadores no genoma de T. cruzi que possibilitem a tipagem do parasito diretamente de amostras clínicas de pacientes, ou de isolados, buscando identificar correlações entre DTUs infectivas, carga parasitária e apresentação clínica da DC. No contexto do estudo BENEFIT (Benznidazole Evaluation for Interrupting Trypanosomiasis), ensaios de qPCR serão aplicados para monitorar parasitemia em pacientes crônicos cardiomiopatas de diferentes países da América do Sul, buscando responder se, mesmo na ausência de cura parasitológica, a droga (benzonidazol) será capaz de reduzir parasitemia nestes indivíduos.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Especialização: (1) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alejandro Schijman - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante / Antônio Gomes P. Ferreira - Integrante / Sergio Sosa Estani - Integrante., Financiador(es): Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Auxílio financeiro.
-
2009 - Atual
Controle de cura na doença de Chagas: Identificação de marcadores substitutos para avaliação de efeitos do tratamento tripanocida em indivíduos com cardiomiopatia chagásica crônica participantes do estudo BENEFIT, Descrição: Em virtude das pobres perspectivas de tratamento com as drogas atuais e ausência de intervenção imune, a doença de Chagas (DC) ainda representa um sério problema de saúde pública, afetando cerca de 10 milhões de indivíduos em todo o mundo e destes, 20-30% eventualmente desenvolverão cardiomiopatia chagásica crônica (CCC) [WHO 2010; RASSI et al., 2010]. A demonstração da eficácia terapêutica ainda é limitada quanto à ausência de critérios de cura consistentes [BRITTO 2009]. Embora a introdução da PCR como ferramenta complementar à sorologia, possibilitou determinar com maior precisão a persistência do Trypanosoma cruzi no pós-tratamento (falha terapêutica), ainda não foi estabelecido se a redução da carga parasitária traria algum benefício clínico aos indivíduos com CCC submetidos à quimioterapia, o que constitui em objetivo principal da presente proposta. Metodologias para estimar níveis absolutos de T. cruzi circulantes permitiriam descrever possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, além de grande utilidade na avaliação prognóstica e eficácia terapêutica. T. cruzi apresenta uma grande diversidade genética, composto por subpopulações ou Discrete Typing Units (DTUs) que circulam nos ambientes silvestres e domésticos [DE FREITAS et al., 2006; ZINGALES et al., 2009; 2012]. Estudos vêm sendo conduzidos buscando um maior entendimento da estrutura populacional deste parasito e a associação entre distribuição geográfica dos principais genótipos (DTUs), ciclos de transmissão e doença [MACEDO et al., 2004; MILES et al., 2009; STURM & CAMPBELL, 2010]. Tal variabilidade genética do parasito, associada à fatores imunogenéticos do hospedeiro e características ambientais, poderia refletir o largo espectro de manifestações clínicas, grau de parasitemia e respostas ao tratamento [MACEDO et al., 2004]. A demonstração do papel do parasito no desenvolvimento da doença é relevante para orientar esforços na busca de estratégias terapêuticas que modifiquem o curso da infecção, visando prevenir progressão da doença cardíaca e morte. Tendo em vista a disseminação da DC para países não-endêmicos, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços na identificação de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida [WHO/PAHO 2011]. Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo tempo de triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. O estabelecimento/validação de um protocolo de qPCR consenso para DC certamente trarão repercussões em distintas áreas, com aplicação em estudos clínicos e epidemiológicos, como a pesquisa dos mecanismos de patogenicidade, resistência e virulência, e história natural da DC. No contexto do BENEFIT (Benznidazole Evaluation for Interrupting Trypanosomiasis) - mais amplo estudo clínico conduzido na DC para esclarecer o impacto do tratamento tripanocida (benzonidazol) em prevenir progressão da doença cardíaca e morte [MARIN-NETO et al., 2008], ensaios de qPCR serão aplicados para monitorar parasitemia em pacientes com CCC de diferentes países da América do Sul. Buscaremos responder se, mesmo na ausência de cura parasitológica, a droga será capaz de reduzir carga parasitária nestes indivíduos, e se esta redução poderá favorecer a história natural da DC crônica cardíaca. Em paralelo identificaremos marcadores no genoma de T. cruzi para tipagem do parasito diretamente de amostras clínicas ou isolados, buscando identificar correlações entre DTUs infectivas, carga parasitária e apresentação clínica da DC.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Especialização: (1) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (2) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Adeilton Brandão - Integrante / Claudia Masini D'Avila-Levy - Integrante / MOREIRA, OTACILIO CRUZ - Integrante., Financiador(es): Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Bolsa.
-
2008 - 2017
Desenvolvimento de um ensaio molecular de PCR multiplex para o rastreamento de triatomíneos infectados por Trypanosoma cruzi, Descrição: A determinação da taxa de infecção por Trypanosoma cruzi em vetores triatomíneos coletados em regiões do Brasil com diferentes índices de endemicidade é relevante para o melhor conhecimento acerca da epidemiologia da doença de Chagas, para vigilância epidemiológica, assim como na elaboração de programas de controle da disseminação desta doença. O método clássico de descrição de infecção natural de triatomíneos por T. cruzi ? o exame microscópico ? apresenta algumas limitações, tais como: baixa sensibilidade, baixa reprodutibilidade, dificuldade de exame nos diferentes estágios evolutivos dos insetos vetores, necessidade da análise em insetos frescos, além de ser um procedimento extremamente laborioso e demorado. Dessa forma, a presente proposta tem como principal objetivo padronizar e validar o ensaio de PCR multiplex como ferramenta molecular diagnóstica de triatomíneos naturalmente infectados com T. cruzi, empregando dois conjuntos de iniciadores: (i) para a detecção do kDNA de T. cruzi (Degrave et al., 1988; Sturm et al., 1989) e (ii) para uma seqüência genômica consenso exclusiva de diversos triatomíneos. Pretende-se identificar através da técnica de PCR multiplex, o índice de infecção natural por Trypanosoma cruzi em triatomíneos silvestres, como Triatoma pseudomaculata, Triatoma sordida, Rhodnius neglectus, Triatoma costalimai e Triatoma wygodzinsky os quais possuem padrões distintos quanto ao desenvolvimento e transmissão de T. cruzi.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Daniela de Pita Pereira - Integrante / Claudia Masini D'Avila-Levy - Integrante / Suzete Araújo Gomes - Integrante / Catarina Macedo Lopes - Integrante.
-
2007 - 2010
Análise de Polimorfismos e Perfil de Expressão Gênica de Marcadores de Reparo de DNA em Pacientes Infantis Portadores de Leucemia Linfóide Aguda do Estado do Rio de Janeiro e Correlações com Aspectos Clínicos pós-Quimioterapia, Descrição: Mecanismos de reparo de DNA participam de um papel central na manutenção da integridade do genoma e na prevenção de mutações pela identificação e remoção de danos no DNA resultantes de carcinógenos ambientais ou de produtos genotóxicos gerados pelo próprio metabolismo oxidativo. Assim, tais sistemas de reparo constituem-se num dos fatores etiológicos de neoplasias incluindo Leucemia Linfoblástica Aguda (LLA) que corresponde ao câncer mais comum na faixa etária infantil. Estudos de associação entre susceptibilidade a câncer e polimorfismos comuns em alguns genes de reparo de DNA, têm sugerido que algumas variações alélicas podem ser responsáveis por baixa capacidade de reparo o que resulta em acúmulos de lesões no DNA com subseqüente geração de células cancerosas pela ocorrência de mutações em genes envolvidos em programas de proliferação, sobrevivência e apoptose. Assim, uma vez demonstrado que variações genéticas interindividuais e perfil de expressão dos genes de reparo de DNA constituem-se não só em fatores etiológicos do processo carcinogênico, mas também modulam o perfil de reposta à quimioterapia podendo servir, em conjunto com marcadores tradicionalmente estabelecidos, como fatores de prognóstico, objetiva-se neste estudo a avaliação da influência de polimorfismos importantes em alguns genes de reparo de DNA na susceptibilidade a LLA através de um estudo tipo caso-controle, avaliando ainda a significância destes polimorfismos como preditores de prognósticos em pacientes tratatos com o protocolo quimioterapêutico BFM. Em adição, será executado um procedimento de quantificação relativa de transcritos associados a alguns genes de reparo DNA (XPD, APEX1, XRCC3 e RAD51) com o intuito de verificar se os perfis de expressão destes genes, em nível de RNA mensageiro, podem atuar como possíveis marcadores do perfil de resposta clínica desenvolvida pelo paciente pós-indução terapêutica.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Especialização: (1) / Mestrado acadêmico: (1) Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Claudia Lage - Coordenador / A Ornellas - Integrante / A Leitão - Integrante / Gilda Alves Brown - Integrante., Número de produções C, T & A: 4
-
2006 - 2012
Benznidazole Evaluation For Interrupting Trypanosomiasis Pilot (BENEFIT), Descrição: Estudo clínico randomizado, duplo cego controlado por placebo, que integra uma rede de países sul americanos visando avaliar clinica e parasitologicamente o impacto do tratamento tripanocida com Benzonidazol, na prevenção da doença de Chagas cardíaca e morte. Nesta rede atuamos como Centro Brasileiro responsável pela realização de testes de PCR no monitoramento da parasitemia em pacientes crônicos cardíacos tratados com Benzonidazol, assistidos em 16 diferentes centros clínicos do país. Além do Brasil, participam Argentina, Colômbia, Bolívia e Peru.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Especialização: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Jose Antonio Marin-Neto, - Integrante / Anis Rassi, Jr, - Integrante / Carlos A. Morillo - Integrante / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante., Financiador(es): Population Health Research Institute - McMaster University - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 5
-
2005 - 2011
Efeito da disponibilidade de ferro no proteoma e na ultraestrutura de Trichomonas vaginalis, Descrição: Identificação e caracterização do perfil de proteases e suas propriedades cinéticas em isolados clínicos frescos e isolados adaptados ao cultivo in vitro, com objetivo de identificar os mecanismos de patogênese do parasito. Serão aplicadas técnicas de eletroforese bidimensional e espectrometria de massas para a identificação de modificações protéicas pós-traducionais e mapeamento de proteínas alvos de medicamentos. O próximo passo será implementar ensaios de interação parasito/célula epitelial vaginal para avaliação da expressão gênica induzida. Esse projeto está sendo conduzido pelo pesquisador conveniado José Batista de Jesus.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Patrícia Cuervo - Integrante / De Jesus, Jose Batista - Coordenador., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro / Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Bolsa / Fundação Oswaldo Cruz - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 3
-
2004 - 2010
Implantação da técnica de PCR em tempo real (Sistema TaqMan) para o diagnóstico de dengue-3, Descrição: Otimização da técnica de PCR em tempo real para detecção de DENV-3 em tecidos provenientes de casos fatais obtidos durante a epidemia de dengue em 2002 no Estado do RJ.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Maria Angelica Cardoso - Integrante / Josélio Maria Galvão de Araújo - Integrante / Ana Maria Bispo de Filippis - Integrante / Hermann G. Schatzmayr - Integrante / Rita Maria Ribeiro Nogueira - Coordenador., Financiador(es): Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Auxílio financeiro / Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa., Número de produções C, T & A: 13
-
2003 - 2005
Detecção de Mycobacterium leprae por PCR para o suporte no diagnóstico clínico da Hanseníase, Descrição: Padronização de distintos métodos para a extração de DNA a partir de biópsias de pele e nervo e realização de análises comparativas entre quatro sistemas de PCR: PCR convencional e em tempo-real (SYBR green, LUX e TaqMan), otimizados para a detecção de Mycobacterium leprae em pacientes hansênicos.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (0) / Especialização: (0) / Mestrado acadêmico: (1) / Mestrado profissional: (0) / Doutorado: (0) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Milton Ozório Moraes - Coordenador / Elizabeth Sampaio - Integrante / Euzenir Sarno - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa / Fundação Oswaldo Cruz - Cooperação., Número de produções C, T & A: 4
-
2002 - Atual
Avaliação de infecção natural de flebotomíneos por Leishmania spp. empregando ensaios de PCR multiplex e PCR em tempo real, Descrição: Considerando a baixa sensibilidade dos métodos clássicos de descrição de infecção natural de flebotomíneos por Leishmania spp., além do fato desses testes serem extremamente laboriosos e exigirem um tempo maior para a confirmação dos resultados, a presente proposta tem como principal objetivo aplicar o ensaio de PCR multiplex associado a hibridização não-radioativa e detecção por revelação enzimática, recentemente otimizado pelo nosso grupo, no diagnóstico molecular de flebotomíneos naturalmente infectados com Leishmania spp, coletados em área endêmica do município do Rio de Janeiro. Além disso, com intuito de contribuir na compreensão do papel do vetor na ocorrência da doença nas áreas endêmicas (alta, média e baixa), será implementada a tecnologia de PCR em tempo real para a medida da carga parasitária nos insetos coletados nestas áreas.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) / Mestrado profissional: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Maria Angelica Cardoso - Integrante / Carlos Roberto Alves - Integrante / Marcos Barbosa Souza - Integrante / Álvaro Luiz Bertho - Integrante / André Barbosa - Integrante / Reginaldo Peçanha Brazil - Integrante / Elizabeth Ferreira Rangel - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro / Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Auxílio financeiro / Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - Bolsa., Número de produções C, T & A: 18
-
2001 - 2007
Melhoramento do diagnóstico da infecção aguda pelo Toxoplasma gondii através de ensaios moleculares de PCR, Descrição: Validação de ensaio de PCR convencional para o diagnóstico acurado de infecção aguda pelo Toxoplasma gondii, e implementação do sistema de PCR em tempo real visando estimar a concentração de parasitos presente no sangue periférico.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (0) / Especialização: (0) / Mestrado acadêmico: (0) / Mestrado profissional: (0) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Maria Angelica Cardoso - Integrante / Octavio Fernandes - Integrante / Maria Regina Amendoeira - Integrante / Cássia Frota - Integrante., Financiador(es): Fundação Oswaldo Cruz - Cooperação / Núcleo Estadual do Ministério da Saúde no Rio de Janeiro - Auxílio financeiro / Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do RJ - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 14
-
1999 - 2018
Avaliação da carga parasitária por PCR em tempo real em pacientes chagásicos submetidos à quimioterapia com benzonidazol, em função das diferentes formas clínicas da doença, Descrição: A partir de amostras de sangue coletadas em diferentes períodos: pré-tratamento e 6, 12 e 18 meses pós-tratamento, serão realizados ensaios de PCR em tempo real com sondas fluorogênicas desenhadas para o genoma mitocondrial do T. cruzi e sequencias nucleares repetitivas do parasito, com a finalidade de comparar a evolução da parasitemia nos indivíduos chagásicos submetidos a tratamento com benzanidazol. Buscamos também correlacionar o comportamento do parâmetro carga parasitária com a evolução clínica dos pacientes tratados.. , Situação: Desativado; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Especialização: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Maria Angelica Cardoso - Integrante / José Borges Pereira - Integrante / Patricia Lago Zauza - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro / Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa / Fundação Nacional de Saúde - Auxílio financeiro / International Agency of Atomic Energy - Auxílio financeiro / Population Health Research Institute - McMaster University - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 13
-
1993 - Atual
Detecção do Trypanosoma cruzi no sangue de pacientes chagásicos crônicos pelo uso da técnica de PCR convencional, Descrição: Avaliar o desempenho do ensaio de PCR convencional como ferramenta molecular de diagnóstico da doença de Chagas, em indivíduos chagásicos crônicos provenientes de diferentes regiões geográficas do Brasil.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) / Especialização: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Carlos Medicis Morel - Integrante / Maria Angelica Cardoso - Integrante / Alejandro Moreno Hasslocher - Integrante / Jose Borges Pereira - Integrante / Octavio Fernandes - Integrante / Vanize Macêdo - Integrante / Ivo Couto Chaves - Integrante / Yara Gomes - Integrante / Reinaldo Gutiérrez Marin - Integrante / Alejandro Luquetti - Integrante / Patricia Lago Zauza - Integrante / Rita de Cássia Antônio da Silva - Integrante / Maria da Glória Bonecini Almeida - Integrante / Gustavo de Sá Queiroz - Integrante / Larisse Chiara Bravo Botelho - Integrante / Michel Braun Jesionek - Integrante / Luiza Corral Martins de Oliveira Ponciano - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa., Número de produções C, T & A: 67
Projetos de desenvolvimento
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante.Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador.Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante.Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de orientações: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro.Número de orientações: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de produções C, T & A: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 1
-
2014 - Atual
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de produções C, T & A: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 1
-
2020 - Atual
Desenvolver ensaio de RT qPCR direcionado para formas metacíclicas de Leishmania spp. e posterior validação em insetos flebotomíneos coletados no campo, Descrição: A partir da análise de expressão gênica diferencial entre os estágios evolutivos de Leishmania spp., identificar marcadores estágio-específicos para genes que são predominantemente expressos nas formas metacíclicas do parasito, buscando o desenvolvimento de ferramenta molecular complementar para auxiliar na incriminação da competência vetorial de espécies de flebotomíneos.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (1) / Mestrado acadêmico: (2) / Mestrado profissional: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Thais Araujo-Pereira - Integrante / Daniela de Pita-Pereira - Integrante / Sandylere Moreira Baia-Gomes - Integrante / Raimundo Leoberto Torres de Sousa - Integrante / Fernando Genta - Integrante.
-
2014 - 2022
Desenvolvimento de PCR em Tempo Real Quantitativa (Sistema TaqMan Triplex) para o Diagnóstico e Avaliação de Eficácia Terapêutica na Doença de Chagas, Descrição: O diagnóstico laboratorial da DC depende da fase da doença sendo que, na aguda, em virtude da grande quantidade de parasitos circulantes, as metodologias utilizadas são aquelas que evidenciam a presença destes por meio do exame a fresco, também por hemocultivo e xenodiagnóstico. Após dois a três meses da infecção inicial, instala-se gradativamente a fase crônica da doença, aumentando a produção de anticorpos específicos dirigidos para diferentes estruturas do T. cruzi, os quais passam a ser detectados por testes imunológicos (SCHATTSCHNEIDER et al., 1992). Os mais comumente utilizados são o imunoensaio enzimático (ELISA), a imunofluorescência indireta (IFI) e a hemaglutinação indireta (HAI). Dentre eles, o ELISA constitui o teste de escolha em virtude de sua facilidade de execução, baixo custo e possibilidade de automação (DA SILVEIRA et al., 2001; GOMES et al., 2009). Com o progressivo controle da transmissão vetorial (MONCAYO & SILVEIRA, 2009) as atenções hoje estão voltadas para o grande contingente de pessoas que são potencialmente infectadas e ainda não identificadas, e para os pacientes já infectados pelo T. cruzi, dos quais uma parcela significativa irá desenvolver a cardiopatia chagásica crônica, forma clínica mais prevalente e maior determinante de sua gravidade. Assim, mais de um século após sua descoberta, a DC ainda é considerada uma doença negligenciada, representando uma ameaça para os sistemas públicos de saúde. Tendo em vista a disseminação da doença para países não endêmicos, como consequência do crescente movimento migratório, as Organizações Governamentais Internacionais têm centrado esforços para identificação e desenvolvimento de marcadores substitutos para avaliar efeitos do tratamento tripanocida (WHO/PAHO 2011). Estes marcadores teriam duas indicações imediatas: desenvolvimento de drogas (reduzindo o tempo para triagem clínica, reduzindo custos) e manejo e monitoramento de pacientes acometidos. Assim, os objetivos desta proposta relacionam-se com a necessidade urgente do estabelecimento/validação de ensaios quantitativos por PCR em Tempo Real (qPCR) para demonstração dos níveis absolutos de T. cruzi circulantes em indivíduos infectados, o que permitirá descrever uma possível correlação entre carga parasitária e progressão da doença, possibilitando a avaliação de prognóstico e eficácia terapêutica. Após reunião de especialistas, organizada pela WHO/PAHO em 2011 na cidade de Buenos Aires, com intuito de estabelecer um protocolo consenso de qPCR para avaliação da resposta ao tratamento na DC, dois alvos moleculares do genoma de T. cruzi (nuclear e mitocondrial) mostraram-se promissores, com sensibilidades semelhantes quando aplicados em ensaios independentes. Neste projeto, buscaremos investigar o potencial de aplicação conjugada destes alvos em uma única reação, empregando o sistema TaqMan multiplex de sondas fluorogênicas específicas para cada marcador genômico, acoplado a um terceiro alvo molecular exógeno, correspondente ao Controle Interno de Amplificação (IAC). Isto poderá promover o aumento da sensibilidade para a detecção de T. cruzi em amostras de pacientes crônicos, que, em sua maioria, apresentam cargas parasitárias próximas ou abaixo dos limites de detecção dos testes empregados atualmente (MOREIRA et al., 2013; DUFFY et al., 2014). Além disso, pretendemos desenvolver uma alternativa que permita o armazenamento da reação em temperatura ambiente por vários meses, o que facilitará seu transporte e armazenamento. Resultados preliminares mostram que algumas reações de qPCR podem ser estocadas em refrigerador (2 - 8 °C) por até 12 meses sem perda da eficiência ou sensibilidade/especificidade. Após o desenvolvimento da metodologia proposta, esta será confeccionada em formato de protótipo de kit diagnóstico por Bio-Manguinhos, utilizando insumos produzidos pelo Instituto de Biologia Molecular do Paraná. , Situação: Concluído; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Técnico de nível médio: (1) Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Otacilio da Cruz Moreira - Integrante / Alexandre Dias Tavares Costa - Integrante / Marco Aurélio Krieger - Integrante / Antônio Gomes Pinto Ferreira - Integrante / Edmilson Domingos da Silva - Integrante / Patrícia Alvarez Baptista - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
-
2011 - 2014
Padronização e validação da técnica de PCR em Tempo Real para quantificação do vírus de febre amarela em amostras clínicas, Descrição: Por mais de 10 anos, vários ensaios de amplificação molecular têm sido desenvolvidos para a detecção de flaviviroses. Esses ensaios têm utilidade no diagnóstico laboratorial para complementar os métodos de diagnósticos já existentes e como uma ferramenta para monitorar a produção de vírus em larga escala (como em biorreatores). Normalmente, o diagnóstico para os vírus de febre amarela e dengue é obtido através do cultivo do vírus em células suscetíveis, onde podem ser utilizadas técnicas como ELISA, Imunofluorescência, imunohistoquímica ou PCR. Para quantificar a carga de partículas infecciosas tanto em cultura celular quanto em amostras de soro, a titulação viral por contagem de placas de lise é o método mais comum. Entretanto, este ensaio tem como desvantagem o fato de consumir muito tempo para sua execução (pelo menos 5 dias). Com o recente desenvolvimento do RT-PCR quantitativo em tempo real, temos disponível uma abordagem mais rápida para quantificar carga viral. O uso de biorreatores no processo de produção de vacinas virais utilizando linhagens de células de mamíferos promove a replicação viral em larga escala, sob condições monitoradas e controladas. Neste contexto, o emprego da técnica de qRT-PCR para monitorar a replicação do vírus é de fundamental importância, uma vez que, permite a coleta do vírus no ápice da replicação otimizando o processo de cultivo em biorreatores e tornando o processo mais eficaz. Este projeto é fruto de uma colaboração recente entre BIOMANGUINHOS (Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos) e Instituto Oswaldo Cruz da FIOCRUZ.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Integrante / Sheila Maria - Integrante / Marcos Freire - Coordenador., Número de produções C, T & A: 1
-
2008 - Atual
Estandardização e validação do uso clínico da PCR na doença de Chagas, Descrição: Esforço da OMS/TDR em eleger entre 26 laboratórios de diferentes países, os protocolos que alcançarem melhores desempenhos quanto à sensibilidade e especificidade de detecção do T. cruzi em sangue.. , Situação: Em andamento; Natureza: Desenvolvimento. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) . , Integrantes: Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto - Coordenador / Ana Carolina Mondaine Rodrigues - Integrante., Financiador(es): Organização Mundial da Saúde - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 1
Prêmios
2020
600 cientistas brasileiros mais influentes do mundo, Journal Plos Biology - Updated science-wide author databases of standardized citation indicators.
2018
Estudo translacional em leucemia infantil: impacto de marcadores de disfunções em reparo de DNA no melhor prognóstico da doença, Editora Abril & Dasa.
2013
Menção honrosa por trabalho apresentado na XXI Reunião Anual de Iniciação Científica da FIOCRUZ - RAIC 2013, Fiocruz/CNPq.
2011
Bolsista Nota 10 para Thaís de Araujo Pereira - estudante de Mestrado, FAPERJ.
2008
Os melhores trabalhos de iniciação científica em 2008 - Congresso de Iniciação Científica da Biologia, Universidade Gama Filho.
Histórico profissional
Endereço profissional
-
Fundação Oswaldo Cruz, Instituto Oswaldo Cruz, Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular. , Avenida Brasil 4365, Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas- Pavilhão Leônidas Deanne, 2o andar, S209, Manguinhos, 21045900 - Rio de Janeiro, RJ - Brasil, Telefone: (21) 38658232, Ramal: 8153, Fax: (21) 25903495
Experiência profissional
2007 - 2010
Universidade Federal do Rio de JaneiroVínculo: Colaborador, Enquadramento Funcional: Co-orientação de Doutorado, Carga horária: 10
2005 - Atual
Fundação Oswaldo CruzVínculo: Servidor público - DAS-1, Enquadramento Funcional: Pesquisador Titular - Chefe de Laboratório, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.
2002 - 2005
Fundação Oswaldo CruzVínculo: Servidor público Chefe Laborat, Enquadramento Funcional: Pesquisador Associado, DAS-1, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.
Outras informações:
Chefe de Laboratório- DAS1
1998 - 2002
Fundação Oswaldo CruzVínculo: Pesq Visitante, Chefe Lab, Enquadramento Funcional: Convênio Fiocruz-Faperj, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.
1992 - 1994
Fundação Oswaldo CruzVínculo: Colaborador, Enquadramento Funcional: Bolsista DTI - CNPq, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.
1982 - 1984
Fundação Oswaldo CruzVínculo: Bolsista Aperfeiçoamento CNPq, Enquadramento Funcional: Estagiário
Atividades
-
01/2006
Pesquisa e desenvolvimento, Instituto Oswaldo Cruz.,Linhas de pesquisa
-
11/2005
Conselhos, Comissões e Consultoria, Vice-Presidência de Pesquisa e Desenvolvimento Tecnológico.,Cargo ou função, Programa Integrado de Doença de Chagas - Coordenador da Rede Temática: Diagnóstico, evolução e patogênese da infecção chagásica.
-
01/2005
Direção e administração, Vice-Presidência de Pesquisa e Desenvolvimento Tecnológico - PDTIS.,Cargo ou função, Coordenador de Programa - Gerente da Plataforma Instrumental multi-usuários de PCR em tempo real.
-
02/2004
Pesquisa e desenvolvimento, Instituto Oswaldo Cruz - Departamento de Virologia.,Linhas de pesquisa
-
03/2002
Pesquisa e desenvolvimento, Instituto Oswaldo Cruz/ Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular.,Linhas de pesquisa
-
10/2001
Ensino, Ensino em Biociências e Saúde, Nível: Pós-Graduação,Disciplinas ministradas, A técnica da reação em cadeia da polimerase e suas aplicações
-
03/2001
Pesquisa e desenvolvimento, Instituto Oswaldo Cruz, Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular.,Linhas de pesquisa
-
01/2001
Conselhos, Comissões e Consultoria, Instituto Oswaldo Cruz - Pós-graduação.,Cargo ou função, Participação em bancas avaliadoras para exame de qualificação; Avaliação de projetos submetidos ao Curso de Pós-graduação.
-
04/2000
Ensino, Biologia Celular e Molecular, Nível: Pós-Graduação,Disciplinas ministradas, A reação em cadeia da polimerase e suas aplicações, Estrutura e Replicação dos ácidos nucleicos, Técnicas aplicadas à Biologia Molecular
-
01/2000
Conselhos, Comissões e Consultoria, Instituto Oswaldo Cruz - Pós Graduação em Biologia Molecular e Celular.,Cargo ou função, Membro do comitê assessor para o concurso de Mestrado; Avaliação de Projetos da Pós-graduação em Biologia Molecular e Celular.
-
08/1998
Direção e administração, Instituto Oswaldo Cruz/ Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular.,Cargo ou função, Chefe do Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas.
-
03/1992
Pesquisa e desenvolvimento, Instituto Oswaldo Cruz, Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular.,Linhas de pesquisa
-
07/2009 - 07/2011
Conselhos, Comissões e Consultoria, Vice-Presidência de Pesquisa e Desenvolvimento Tecnológico.,Cargo ou função, Coordenadora do Programa Integrado em Doença de Chagas (PIDC) da FIOCRUZ - O PIDC articula a cooperação entre pesquisadores da Fiocruz, de Instituiçòes Nacionais de Pesquisa e Ensino em redes temáticas, de modo a aumentar a eficiência da pesquisa e f.
Você é Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto?
Que tal assumir essas informações?
Basta criar uma conta no Escavador e enviar uma forma de comprovante. São três passos:
Escolha uma dentre três formas de verificação: Facebook, CPF ou Documento com Foto.
O Escavador irá analisar a sua solicitação.
As informações presentes nessa página serão transferidas para a sua página do perfil.
Depois do processo concluído, quem acessar essa página será redirecionado para seu cantinho no Escavador, seunome.escavador.com. Onde você poderá fazer a sua reputação, conhecer gente antenada, se informar e até mesmo ganhar clientes. Tudo isso de graça!
Criando um monitoramento
Nossos robôs irão buscar nos nossos bancos de dados todos os processos de Constança Felícia De Paoli de Carvalho Britto e sempre que o nome aparecer em publicações dos Diários Oficiais, avisaremos por e-mail e pelo painel do usuário
Criando um monitoramento
Nossos robôs irão buscar nos nossos bancos de dados todas as movimentações desse processo e sempre que o processo aparecer em publicações dos Diários Oficiais e nos Tribunais, avisaremos por e-mail e pelo painel do usuário
Confirma a exclusão?