Sinara Santos Jardim

Doutora e mestre em Biodiversidade Animal na área de concentração Sistemática e Biologia Evolutiva pela Universidade Federal de Santa Maria. Graduada em Ciências Biológicas - UFSM. Desenvolveu sua pesquisa no Laboratório de Biologia Molecular e Sequenciamento -LabDros, UFSM- sobre a expressão gênica e fenotípica de um elemento de transposição em diferentes condições de estresse em drosofilídeos (Diptera Drosophildae). Participou, como colaboradora, no Laboratório de Genética Evolutiva no Centro de Educação Superior Norte-RS da Universidade Federal de Santa Maria, campus Palmeira das Missões. Atualmente é Analista de Laboratório na empresa BiomeHub e responsável pelo diagnóstico molecular da Covid-19.

Informações coletadas do Lattes em 19/06/2024

Acadêmico

Formação acadêmica

Doutorado em Biodiversidade Animal

2012 - 2016

Universidade Federal de Santa Maria
Título: Dinâmica do elemento de transposição mariner sob condições de estresse em Drosophila simulans
Élgion Lúcio da Silva Loreto. Coorientador: André Passaglia Schuch. Bolsista do(a): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio Grande do Sul, FAPERGS, Brasil.

Mestrado em Biodiversidade Animal

2010 - 2012

Universidade Federal de Santa Maria
Título: Variabilidade da atividade do elemento de transposição mariner em populações naturais de Drosophila simulans (Diptera, Drosophilidae)),Ano de Obtenção: 2012
Élgion Lúcio da Silva Loreto.Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil.

Graduação em Formação Pedagógica em Ciências Biológicas

2018 - 2019

Universidade Norte do Parana

Graduação em Ciências Biológicas

2006 - 2009

Universidade Federal de Santa Maria
Título: Padronização de técnicas e análise da atividade do transposon mariner sob diferentes temperaturas em olhos mosaicos white-peach de Drosophila simulans
Orientador: Élgion Lúcio da Silva Loreto
Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil.

Formação complementar

2019 - 2019

Tecnologias da Informação e da Comunicação. (Carga horária: 20h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2019 - 2019

Altas Habilidades e Superdotação. (Carga horária: 20h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2019 - 2019

Introdução à Inclusão da Criança com Síndrome de Down. (Carga horária: 10h). , Instituto Politécnico de Ensino a Distância, iPED, Brasil.

2019 - 2019

O Uso da Imagem no Ensino por uma Abordagem Interdisciplinar. (Carga horária: 20h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2019 - 2019

Introdução à Gestão Ambiental e Recursos Hídricos. (Carga horária: 10h). , Instituto Politécnico de Ensino a Distância, iPED, Brasil.

2019 - 2019

Estratégias em Marketing Digital. (Carga horária: 40h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2019 - 2019

Atividades Lúdicas: Atividades Corporais. (Carga horária: 10h). , Instituto Politécnico de Ensino a Distância, iPED, Brasil.

2019 - 2019

Curso de Introdução Transtorno do Déficit de Atenção com Hiperatividade (T. (Carga horária: 10h). , Instituto Politécnico de Ensino a Distância, iPED, Brasil.

2019 - 2019

Gestão de Tecnologia da Informação e Comunicação. (Carga horária: 20h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2019 - 2019

Motivação no Ensino Superior: Metas de Realização e Estratégias. (Carga horária: 20h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2019 - 2019

Responsabilidade Social e Capital Humano. (Carga horária: 20h). , Universidade Norte do Paraná, UNOPAR, Brasil.

2016 - 2016

Tópicos essenciais em metabolismo de DNA e Genotoxicologia. (Carga horária: 8h). , Congresso da Mutagen-Brasil, CMB, Brasil.

2016 - 2016

Análise Filogenética. (Carga horária: 20h). , Universidade Federal de Santa Maria - Palmeira das Missões, UFSM, Brasil.

2014 - 2014

PCR quantitativo em tempo real. (Carga horária: 15h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2009 - 2009

Extensão universitária em Genética, Taxonomia e Evolução de Drosofilídeos. (Carga horária: 60h). , Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.

2009 - 2009

Noções básicas de técnicas de detecção de lesões e. (Carga horária: 8h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2008 - 2009

Extensão universitária em Projeto Institucional de Extensão. (Carga horária: 62h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2008 - 2009

estágio Lab. Biologia Molecular e Sequenciamento. (Carga horária: 1040h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2008 - 2008

Extensão universitária em A Redação Científica e Publicação. (Carga horária: 40h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2008 - 2008

Extensão universitária em Conhecendo o Bioma Pampa. (Carga horária: 20h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2008 - 2008

Biologia Molecular para Iniciantes. (Carga horária: 20h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2008 - 2008

A Redação Científica e Publicação. (Carga horária: 40h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2007 - 2008

estágio Lab. Biogenômica. (Carga horária: 1200h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2007 - 2007

estágio Lab. Interação Inseto-Planta. (Carga horária: 100h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2007 - 2007

Prática em pesquisa genético epidemiológica. (Carga horária: 120h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2006 - 2007

Monitora da Disciplina de Histologia. (Carga horária: 240h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2006 - 2006

História de descoberta de uma nova doença no Brasi. (Carga horária: 12h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

2006 - 2006

Oficinas de ensino de biologia. (Carga horária: 4h). , Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, Brasil.

Idiomas

Bandeira representando o idioma Inglês

Compreende Bem, Fala Bem, Lê Bem, Escreve Bem.

Áreas de atuação

Grande área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular.

Grande área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Molecular e de Microorganismos.

Grande área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Animal.

Grande área: Ciências Biológicas / Área: Biotecnologia / Subárea: Biotecnologia Ambiental e Recursos Naturais/Especialidade: Biodiversidade.

Grande área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Mutagenese.

Organização de eventos

JARDIM, S. S. . IV Simpósio de Biodiversidade. 2013. (Outro).

JARDIM, S. S. . III Simpósio de Biodiversidade. 2011. (Outro).

JARDIM, S. S. . XVII Encontro de Geneticistas do Rio Grande do Sul - Genética e Conservação da Biodiversidade. 2010. (Outro).

JARDIM, S. S. . II Simpósio de Biodiversidade. 2009. (Outro).

Participação em eventos

II Workshop de Genética Evolutiva. 2016. (Encontro).

II Workshop de Genética Evolutiva. 2016. (Encontro).

Simpósio de Genética e Biologia Molecular: Tendências em Bioinformática. 2016. (Simpósio).

XII Congresso da MutaGen - Brasil. Transposition mechanism of mariner-mos1 under stress conditions. 2016. (Congresso).

VIII Simpósio de Ecologia, Genética e Evolução de Drosophila.Mariner transposable element activity under stress conditions. 2013. (Simpósio).

II Congresso Uruguayo de Zoología. 2012. (Congresso).

XVIII Encontro de Geneticistas do Rio Grande do Sul.Quantificação da atividade do elemento transponível mariner em linhagens naturais de Drosophila simulans (Diptera, Drosophilidae). 2012. (Encontro).

III Simpósio de Biodiversidade. 2011. (Simpósio).

Seminário Interinstitucional de Ensino, Pesquisa e Extensão: 15 anos Construindo Sentidos na Diversidade. XIII Mostra de Iniciação Científica e VIII Mostra de Extensão.Variabilidade da atividade do elemento de transposição mariner em populações naturais de Drosophila simulans (Diptera, Drosophilidae). 2010. (Seminário).

UNITIG2010. 2010. (Outra).

XVII Encontro de Geneticistas do Rio Grande do Sul. 2010. (Encontro).

24ª Jornada Acadêmica Integrada.Atividade do elemento de transposição mariner relacionada a diferentes temperaturas em olhos mosaicos white-peach de Drosophila simulans. 2009. (Outra).

II Simpósio de Biodiversidade.Padronização de técnicas de quantificação da atividade do elemento de transposon mariner em olhos mosaicos white-peach de Drosophila simulans. 2009. (Simpósio).

IX Jornadas de Zoología del Uruguay.Uso da técnica transposon display para detectar mobilização de elementos transponíveis em drosophila willistoni (insecta, diptera), utilizando nitrato de prata.. 2008. (Outra).

XVI Encontro de Geneticistas do RS. 2008. (Encontro).

XXI Semana Acadêmica de Biologia. 2008. (Outra).

I Simpósio de Biodiversidade. 2007. (Simpósio).

I Simpósio Regional de Atualização em Terapia Regenerativa com Células-Tronco. 2007. (Simpósio).

VIII Congresso de Ecologia do Brasil. 2007. (Congresso).

II Simpósio Gaúcho de Animais Selvagens. 2006. (Simpósio).

XIX Semana Acandêmica da Biologia. 2006. (Simpósio).

Produções bibliográficas

  • JARDIM, SINARA SANTOS ; SCHUCH, ANDRÉ PASSAGLIA ; PEREIRA, CAMILA MOURA ; LORETO, ELGION LUCIO SILVA . Effects of heat and UV radiation on the mobilization of transposon mariner-Mos1. Cell Stress & Chaperones (Print) , v. 20, p. 1-9, 2015.

  • SCHUCH, A. P. ; MENDES LIPINSKI, VICTOR ; DOS SANTOS, MAURICIO BEUX ; SANTOS, C. P. ; JARDIM, SINARA SANTOS ; CECHIN, S. Z. ; LORETO, E. L. S. . Molecular and sensory mechanisms to mitigate sunlight-induced DNA damage in treefrog tadpoles. Journal of Experimental Biology , v. 218, p. 3059-3067, 2015.

  • RIFFEL, A. P. K. ; JARDIM, S. S. ; PIRES, M. C. ; BERTAGNOLLI, B. ; CORREA, B. R. S. ; RE, F. C. ; ZAMBRA, F. M. B. ; LUBINI, G. ; GARCIA, L. O. ; BALDISSEROTTO, B. . pH preferencial em jundiás Rhamdia quelen aclimatados em diferentes níveis de pH. Ciência Rural (UFSM. Impresso) , v. 42, p. 834-836, 2012.

  • JARDIM, S. S. ; Élgion Loreto . Comparative methodologies for estimating mariner activity using white-peach assay in Drosophila simulans. Drosophila Information Service , v. 94, p. 129-132, 2011.

  • OLIVEIRA, P. S. ; JARDIM, S. S. ; DAVILA, M. F. ; GRAICHEN, D. A. S. . An Evaluation of the Genomic Relationship Between Echinococcus and Their Hosts as an Opportunity to Horizontal Transposon Transfer. In: Escola Gaúcha de Bioinformática - EGB 2017, 2017, Porto Alegre. Trabalhos Aceitos (Pôsters), 2017.

  • OLIVEIRA, P. S. ; JARDIM, S. S. ; DAVILA, M. F. ; GRAICHEN, D. A. S. . Characterization of mobile genetic elements of Schistosoma japonicum in next-generation sequencing data. In: XXV Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2017, Búzios. anais, 2017.

  • WELTER, S. G. ; JARDIM, S. S. ; DIAS, T. D. ; GETELINA, M. A. ; SCHWANTES, J. B. ; DAVILA, M. F. ; GRAICHEN, D. A. S. ; QUEVEDO, P. S. . A case report of Trimenopon hispidium infestations in Cavia aperea (Rodentia, Caviidae). In: XXV Congresso Brasileiro de Parasitologia, 2017, Búsios. Anais, 2017.

  • JARDIM, S. S. ; SCHUCH, ANDRÉ PASSAGLIA ; LORETO, E. L. S. . Transposition mechanism of mariner-mos1 under stress conditions. In: XII CONGRESSO DA MUTAGEN-BRASIL, 2016, INDAIATUBA - SÃO PAULO. XII CONGRESSO DA MUTAGEN-BRASIL - Resumos, 2016.

  • JARDIM, S. S. ; SCHUCH, A. P. ; LORETO, E. L. S. . Mariner transposable element activity under stress conditions. In: VIII Simpósio de Ecologia, Genética e Evolução de Drosophila, 2013, Pernambuco. VIII Simpósio de Ecologia, Genética e Evolução de Drosophila, 2013.

  • JARDIM, S. S. ; LORETO, E. L. S. . Quantificação da atividade do elemento transponível mariner em linhagens naturais de Drosophila simulans (Diptera, Drosophilidae). In: XVIII Encontro de geneticistas do Rio Grande do Sul, 2012, Santana do Livramento. XVIII Encontro de geneticistas do Rio Grande do Sul, 2012.

  • JARDIM, S. S. ; LORETO, E. L. S. ; Sá, Rithiele . Variabilidade da atividade do elemento de transposição mariner em populações naturais de Drosophila simulans (Diptera, Drosophilidae)). In: Seminário Interinstitucional de Ensino, Pesquisa e Extensão: 15 anos Construindo Sentidos na Diversidade. XIII Mostra de Iniciação Científica e VIII Mostra de Extensão, 2010, Cruz Alta. Seminário Interinstitucional de Ensino, Pesquisa e Extensão, 2010.

  • JARDIM, S. S. ; GOLOMBIESKI, R. M. ; LORETO, E. L. S. . Padronização de técnicas de quantificação da atividade do elemento de transposição mariner em olhos mosaicos white-peach de Drosophila simulans. In: II Simpósio de Biodiversidade, 2009, Santa Maria. II Simpósio de Biodiversidade, 2009.

  • JARDIM, S. S. ; GOLOMBIESKI, R. M. ; LORETO, E. L. S. . Atividade do elemento de transposição mariner relacionada a diferentes temperaturas em olhos mosaicos white-peach de Drosophila simulans.. In: Jornada Acadêmica Integrada, 2009, Santa Maria. Jornada Acadêmica Integrada, 2009.

  • JARDIM, S. S. ; GOLOMBIESKI, R. M. ; LORETO, E. L. S. . Uso da técnica transposon display para detectar mobilização de elementos transponíveis em drosophila willistoni (insecta, diptera), utilizando nitrato de prata.. In: IX Jornadas de Zoología del Uruguay, 2008, Montevideo. IX Jornadas de Zoología del Uruguay, 2008.

  • JARDIM, S. S. . Uma visão molecular de respostas às mudanças ambientais. 2016. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

Outras produções

JARDIM, S. S. ; FONSECA, P. M. . Ferramentas de Biologia Molecular para estudo da Biodiversidade. 2013. .

Projetos de pesquisa

  • 2012 - 2016

    Dinâmica do elemento de transposição mariner sob condições de estresse em Drosophila simulans, Descrição: A capacidade de excisão e inserção dentro e entre genomas é característica essencial dos elementos transponíveis (TEs). A mobilização dá aos TEs o papel de contribuir com a mutagênese e a variabilidade genética. Contudo, os mecanismos que desencadeiam a ativação dos TEs em condições de estresse ainda não estão bem esclarecidos. Na linhagem mutante Drosophila simulans white-peach o transposon mariner-Mos1 se mobiliza tanto em células somáticas quanto em germinativas. Esta linhagem apresenta uma característica peculiar, pois permite o estudo da transposição do elemento através da formação de manchas nos olhos. Assim, foi avalido se a expressão e transposição do elemento eram induzidas por agentes estressores como: radiação ultravioleta (UVC), temperatura moderada (28°C) e dano oxidativo (paraquat). Para medir a expressão gênica de mariner-Mos1 e dos genes de controle positivo Hsp70 e superóxido dismutase (Sod) foi usado RT-qPCR. A avaliação da transposição somática do elemento foi baseada no número de manchas vermelhas nos olhos da linhagem mutante submetida aos estresses. Cada mancha representa um evento de transposição. Além disso, foi realizada uma análise do ciclo celular e do tempo de desenvolvimento após estresses. Os resultados juntos sugeriram que a expressão de mariner-Mos1 não é diretamente compartilhada em resposta a Hsp70. Contudo, 28°C aumentou a expressão de Hsp70, mariner- Mos1 e o número de manchas. Além disso, as moscas tratadas com esse estresse mostraram reduzido tempo de desenvolvimento e rápida progressão no ciclo celular. Em contraste, após UVC, foi observado um longo tempo de desenvolvimento das moscas bem como um atraso na progressão celular. Assim os resultados indicaram que o calor moderado induziu a transcrição e transposição do elemento, UVC não foi capaz de induzir ambos os fatores, mas induzem a expressão de Hsp70, possivelmente com diferentes vias de ativação.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) Doutorado: (1) . , Integrantes: Sinara Santos Jardim - Integrante / LORETO, E. L. S. - Coordenador / André Passaglia Schuch - Integrante / Camila de Moura Pereira - Integrante., Número de produções C, T & A: 5

  • 2011 - 2015

    Elementos de transposição: prospecção de novos vetores de transformação nos genomas e mecanismos de transferência horizontal, Descrição: Os transposons vêm sendo utilizados como vetores de transformação de vários organismos, e em particular espera-se que, em breve, insetos geneticamente modificados (IGM) poderão ser utilizados no controle de populações de vetores de doenças como malária e dengue. Também se espera o uso de IGMs no controle de pragas agrícolas. Nosso grupo de pesquisa vem caracterizando transposons presentes no genoma de espécies Neotropicais de Drosophila e alguns deles apresentam características sugestivas de que possam ser bons vetores de transformação e eventuais difusores de genes (gene driver). Propomos neste projeto, isolar elementos das superfamílias hAT e Tc1-mariner supostamente ativos e testar seus potenciais como vetores de transformação através de ensaios de excisão em embriões de Drosophila; ensaios de transposição em embriões de Drosophila e em células de Drosophila e mamíferos e, por transformação genética de Drosophila melanogaster e D. simulans.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Integrantes: Sinara Santos Jardim - Integrante / ELGION LUCIO SILVA LORETO - Coordenador.

  • 2010 - 2012

    Variabilidade da atividade do elemento de transposição mariner em populações naturais de Drosophila simulans, Descrição: Os elementos de transposição (TEs) são sequências de DNA com a capacidade de moverem- se de uma região cromossômica para outra. Estes elementos apresentam mecanismos de transposição diferenciados e diversidade em suas sequências conferindo-lhes ampla distribuição entre a maioria dos organismos. O transposon de DNA mariner é encontrado numa gama de organismos, sendo ubíquo nos eucariotos e é excelente para estudar o comportamento dos TE dentro de populações naturais de Drosophila. Entre as populações naturais de D. simulans há variações no número de cópias de mariner e, consequentemente, na sua atividade. Porém, dentro de uma mesma população tais variações são pouco avaliadas. O objetivo do projeto foi estimar a atividade do mariner em populações naturais de D. simulans a partir de análises fenotípicas e moleculares. A análise através do fenótipo ocorreu a partir do cruzamento entre linhagens de populações naturais e a linhagem mutante, D. simulans white-peach. Os machos da F1 apresentaram nos olhos manchas de reversão à condição selvagem num contexto white-peach, que foram utilizadas para estimar a atividade. A análise molecular quantificou o número de cópias de mariner por qPCR e mostrou variação no número de cópias.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) . , Integrantes: Sinara Santos Jardim - Integrante / Élgion Loreto - Coordenador., Número de produções C, T & A: 5

Prêmios

2016

Apresentação oral no Simpósio n 10 ? MutaGen Young Talents II, XII Congresso da MutaGen-Brasil.

Histórico profissional

Experiência profissional

2008 - 2016

Universidade Federal de Santa Maria

Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Pós-Graduação, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.

Outras informações:
Experiência acadêmica em laboratório de biologia molecular: - experiência acadêmica na técnica de qPCR em tempo real, procedimento completo desde o desenho dos primers, passando pela a extração de RNA até análise final dos dados; Noções de sequenciamento de DNA, bioinformática e citômetro de fluxo

Atividades

  • 07/2008 - 04/2016

    Pesquisa e desenvolvimento, Laboratório de Biologia Molecular e Sequenciamento - LabDros.,Linhas de pesquisa

2020 - Atual

BiomeHub, BiomeHub

Vínculo: Colaborador privado, Enquadramento Funcional: Analista de Laboratório, Carga horária: 44, Regime: Dedicação exclusiva.

Outras informações:
- Responsável por todo o processamento de amostras de nasofaringe para detecção molecular do vírus Covid-19. Desde o recebimento da amostra no laboratório, passando por todo o processo de extração do RNA viral, amplificação por qPCR em tempo real até a interpretação e liberação do resultado (BiomeHub, SC, 2020-atual). - Preenchimento de documentos de acordo com os procedimentos vigentes; Analise os resultados de acordo com as especificações técnicas; Investigação de resultados fora de especificação; Participações de investigações de não conformidades; Participação e realização de treinamentos internos e externos; - Outras atribuições: Elaboração e revisão de procedimentos operacionais padrão (POPs) e instrução de trabalho (IT). Suporte às atividades auxiliares como preparo, esterilização e controle de qualidade de materiais, meios de cultura e reagentes; Manutenção, limpeza e checagem dos equipamentos de laboratório; Manutenção e limpeza geral do laboratório; Gerenciamento de resíduos.