Vania Santos Braz

Graduada em Licenciatura Plena e Bacharel em Ciências Biológicas pela Universidade de Mogi das Cruzes, Mestre e Doutora em Ciências Biológicas (Microbiologia) pelo Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo. O primeiro pós-doutorado foi realizado no ICB-USP desenvolvendo o projeto Estudo de dois fatores de transcrição envolvidos na resposta a cádmio. Neste período adquiri uma excelente experiência acadêmica na área de Microbiologia, com ênfase em Genética de Microrganismos e Biologia Molecular, atuando principalmente nos seguintes temas: Caulobacter crescentus, regulação gênica, fatores de transcrição, estresse oxidativo e metais. O segundo pós-doutorado foi realizado em pesquisas biotecnológicas na empresa Proteobras localizada na Techno Park - Campinas, desenvolvendo projetos de expressão e purificação de proteínas recombinantes de interesse sócio-econômico. Retornei para o departamento de Microbiologia do ICBII USP desenvolvendo o projeto de pós-doutorado Estudo da DNA polimarase DinB envolvida na mutagênese e reparo na alfa proteobactéria Caulobacter crescentus. Durante este período foram realizadas apresentações de painéis e seminários em congressos nacionais e internacionais, além da elaboração de manuscritos para publicação em periódicos científicos. Após mudança para Ribeirão Preto e realizei um projeto de pós-doutorado com bolsa PNPD/CAPES Investigação do padrão de expressão de genes envolvidos na degradação de herbicidas e na resistência ao aztreonam em isolados bacterianos ambientais no Departamento de Análises Clínicas, Toxológicas e Bromatólogicas da Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP. Em seguida realizou um pós-doutorado com bolsa PNPD/CAPES desenvolvendo o projeto "Mapeamento molecular da região regulatória da sinalização química via QseC em Salmonella enterica sorovar Typhimurium" no Programa de Pós-graduação em Biociências Biotecnologia Aplicadas à Farmácia na Faculdade de Ciências Farmacêuticas Campus de Araraquara, UNESP. No momento,sou Pesquisadora associada na BioSmart com projeto PIPE fase 1 apoiado pela FAPESP, desenvolvendo estratégias para administração de compostos no controle de Salmonella em animais de criação.

Informações coletadas do Lattes em 24/06/2020

Acadêmico

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Formação acadêmica

Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)

2002 - 2006

Universidade de São Paulo
Título: Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus.
Marilis do Valle Marques. Bolsista do(a): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo, FAPESP, Brasil. Palavras-chave: Caulobacter crescentus; metais; regulação gênica; estresse ambiental.Grande área: Ciências BiológicasGrande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Biologia e Fisiologia dos Microorganismos. Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Molecular e de Microorganismos. Setores de atividade: Outros Setores.

Mestrado em Ciências Biológicas (Microbiologia)

1999 - 2001

Universidade de São Paulo
Título: Caracterização do operon pep de Caulobacter crescentus,Ano de Obtenção: 2001
Marilis do Valle Marques.Bolsista do(a): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo, FAPESP, Brasil. Palavras-chave: Caulobacter crescentus; endopeptidase; família M3; regulação gênica.Grande área: Ciências BiológicasGrande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Biologia e Fisiologia dos Microorganismos. Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Molecular e de Microorganismos. Setores de atividade: Outros Setores.

Aperfeiçoamento em Ciências biomédicas - Microbiologia

1997 - 1999

Universidade de São Paulo
Título: Sequenciamento do operon pep. Ano de finalização: 1999
Orientador: Marilis do Valle Marques
Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil.

Graduação em Licenciatura e Bacharel em Ciências Biológicas

1992 - 1995

Universidade de Mogi das Cruzes

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Pós-doutorado

2019

Pós-Doutorado. , BIOSMART NANOTECHNOLOGY, BSnano, Brasil. , Bolsista do(a): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo, FAPESP, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas

2018 - 2019

Pós-Doutorado. , Faculdade de Ciências Farmacêuticas do Câmpus de Araraquara-UNESP, FCF UNESP, Brasil. , Bolsista do(a): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas, Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Biologia e Fisiologia dos Microorganismos / Especialidade: Bacteriologia. , Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular / Especialidade: Regulação gênica.

2015 - 2018

Pós-Doutorado. , Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP, FCFRP-USP, Brasil. , Bolsista do(a): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas, Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Molecular e de Microorganismos. , Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Microbiologia Ambiental.

2011 - 2013

Pós-Doutorado. , Instituto de Ciências Biomédicas, ICB, Brasil. , Bolsista do(a): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo, FAPESP, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas, Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Mutagenese.

2010 - 2011

Pós-Doutorado. , Proteobras - Desenvolvimento Biotecnológico, PROTEOBRAS, Brasil. , Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas

2006 - 2009

Pós-Doutorado. , Instituto de Ciências Biomédicas, ICB, Brasil. , Bolsista do(a): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo, FAPESP, Brasil. , Grande área: Ciências Biológicas, Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular. , Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Biologia e Fisiologia dos Microorganismos.

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Formação complementar

2018 - 2018

Ciência de Animais de Laboratório. (Carga horária: 8h). , Faculdade de Ciências Farmacêuticas do Câmpus de Araraquara-UNESP, FCF UNESP, Brasil.

2018 - 2018

Empreende na Supera Incubadora.. (Carga horária: 20h). , Supera Parque de Inovação e Tecnologia de Ribeirão Preto, SUPERA, Brasil.

2009 - 2009

Treinamento no Uso de Animais de Experimetação. (Carga horária: 4h). , Instituto de Ciências Biomédicas, ICB, Brasil.

2005 - 2005

Evolução d proteínas através d embaralhamento DNA. (Carga horária: 3h). , Sociedade Brasileira de Genética, SBG, Brasil.

2005 - 2005

Principles of Gene Regulation in Bacteria.. (Carga horária: 10h). , Universidade de São Paulo, USP, Brasil.

2004 - 2004

Aspectos Mols dos processos adaptativos em Microrg. (Carga horária: 3h). , Sociedade Brasileira de Genética, SBG, Brasil.

2003 - 2003

Extensão universitária em Curso de radioproteção. (Carga horária: 45h). , Universidade de São Paulo, USP, Brasil.

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Idiomas

Inglês

Compreende Razoavelmente, Fala Razoavelmente, Lê Bem, Escreve Razoavelmente.

Espanhol

Compreende Razoavelmente, Fala Pouco, Lê Pouco.

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Áreas de atuação

    Grande área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia.

    Grande área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Genética Molecular e de Microorganismos.

    Grande área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Biologia e Fisiologia dos Microorganismos.

    Grande área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Biologia e Fisiologia dos Microorganismos/Especialidade: Bacteriologia.

    Grande área: Ciências Biológicas / Área: Bioquímica / Subárea: Biologia Molecular.

    Grande área: Ciências Biológicas / Área: Genética / Subárea: Mutagenese.

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Participação em eventos

30 Congresso Brasileiro de Microbiologia. STUDY OF REGULATORY REGION SHARED BY TWO TRANSCRIPTION FACTORS QseB, TWO-COMPONENT SYSTEM AND YgiV, A REGULATOR OF THE AraC FAMILY IN Salmonella enterica serovar Typhimurium. 2019. (Congresso).

30 Congresso Brasileiro de Microbiologia. TECHNOLOGICAL STRATEGIES FOR ADMINISTRATION OF AN ANTIVIRULENCE COMPOUND AGAINST SALMONELLOSIS IN FARM ANIMALS. 2019. (Congresso).

29 Congresso Brasileiro de Microbiologia - CBM. Investigation of bacterial soil isolates with antimicrobial activity potential. 2017. (Congresso).

I Workshop in Microbial Molecular Biology.Investigation of bacterial soil isolates with antimicrobial activity Potential. 2017. (Simpósio).

XV Encontro Nacional de Microbiologia Ambiental ? ENAMA. Diuron and atrazine change the antimicrobial resistance profile of environmental isolates of Pseudomonas aeruginosa. 2017. (Congresso).

III Escola de Inverno em Biociência e Biotecnologia Aplicadas à Farmácia.Microbiologia ambiental: Biorremediação e resistência bacteriana. 2016. (Encontro).

II Simpósio de Microbiologia Agrícola da ESALQ: Microbiologia in foco. 2016. (Simpósio).

Workshop Web of Science - FEARP/USP. 2016. (Oficina).

58° Congresso Brasileiro de Genética - SBG. Study of DinB DNA Polymerase of Caulobacter crescentus Involved in Mutagenesis and Repair. 2012. (Congresso).

Pré evento do 58° SBG- Reunião de Genética de Microrganismos - REGEM.Study of DinB DNA Polymerase of Caulobacter crescentus Involved in Mutagenesis and Repair.. 2012. (Simpósio).

XXXIX Annual Meeting of Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology (SBBq). CztR, a LysR-type transcriptional regulator involved in zinc homeostasis and oxidative stress defense in Caulobacter crescentus.. 2010. (Congresso).

55 Congresso Brasileiro de Genética.. 2009. (Congresso).

Burgess Symposium - Past, present, and future of transcriptional regulation.. 2009. (Simpósio).

Molecular Genetics of Bacteria and Phages Meeting.. Investigating the Role of a Novel Transcriptation Regulator Belonging to the BlaI Family in Caulobacter crescentus.. 2009. (Congresso).

1 siPDusp - Simpósio Internacional de Pós-Doutorado da USP.Papel de um regulador de transcrição da família BlaI na resposta a estresse oxidativo em Caulobacter crescentus.. 2008. (Simpósio).

26 Reunião de Genética de Microrganismos.Papel de um regulador de transcrição da família BlaI na resposta a estresse oxidativo em Caulobacter crescentus.. 2008. (Simpósio).

54 Congresso Brasileiro de Genética. Papel de um regulador de transcrição da família BlaI na resposta a estresse oxidativo em Caulobacter crescentus.. 2008. (Congresso).

ASM's 108th General Meeting. A LysR-type Transcriptional Regulator of Caulobacter crescentus Is Involved in Oxidative Stress Response. 2008. (Congresso).

V Congresso do Instituto de Ciências Biomédicas. Papel de um regulador de transcrição da família BlaI na resposta a estresse oxidativo em Caulobacter crescentus.. 2008. (Congresso).

53° congresso Brasileiro de Genética. Estudo de um fator de transcrição do tipo LysR em Caulobacter crescentus.. 2007. (Congresso).

XXXVI Annual Meeting of the Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology - SBBq. 2007. (Congresso).

25 Reunião de Genética de Microrganismos.Identificação de um cluster de genes envolvidos na resistência a cádmio em Caulobacter crescentus. 2006. (Simpósio).

51 Congresso Brasileiro de Genética. Identificação de genes envolvidos na resposta a ferro em Culobacter crescentus. 2005. (Congresso).

IV Congresso do Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo. Identificação de genes envolvidos na resposta a ferro em Caulobacter crescentus. 2005. (Congresso).

50° congresso Brasileiro de Genética. Identificação de mutantes selecionados para resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2004. (Congresso).

XXII Congresso Brasileiro de Microbiologia 2003. Isolamento de mutantes envolvidos na resposta a metai em Caulobacter crescentus. 2003. (Congresso).

48 Congresso Nacional de Genética. Análise da expressão de metaloreguladores envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2002. (Congresso).

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Participação em bancas

Aluno: João Paulo Pereira de Almeida

KOIDE, T.;BRAZ VS; Cruz, A.K.;MARQUES, M.V.. O transcritoma antisense primário de Halobacterium salinarum NRC-1.. 2018. Dissertação (Mestrado em Ciências - Área: Bioquímica) - Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto - USP.

Aluno: Daniela Eleutério da Luz

BRAZ, V.S.. Estudo do papel do sistema de captação de fosfato inorgânico (Pst) na fisiologia e patogenicidade de Streptococcus mutans.. 2010. Dissertação (Mestrado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Aluno: ELISA EMIKO OSHIRO

BENEDETTII, C.E.; OLIVEIRA, J.C.F.;BRAZ, V.S.; MALDONADO, G.P.; FERREIRA, R.C.C.. Análise Funcional das proteínas captadoras de molibdato (ModA) e oligopeptídeo (OppA) de Xanthomonas axonopodis pv. citri.. 2010. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Aluno: Carolina Nogueira Gomes

STEHLING, E. G.; DA SILVA NETO, JOSÉ FREIRE;BRAZ VS. High survival rates of Campylobacter coli under different stress conditions suggest that more rigorous control measures may be needed in Brazil. 2017. Exame de qualificação (Doutorando em Programa de Pós-Graduação em Biociências Aplicada à Farmácia) - Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP.

Aluno: Marco Aurelio Bambozzi Comar

SOARES, C. P.;BRAZ, V.S.; NUNES, F. M. F.. Identificação de proteínas determinantes da fase G1 do ciclo celular diferencialmente presentes em Saccharomyces cerevisiae em mutantes de eIF5A. 2020. Exame de qualificação (Mestrando em Biociências e Biotecnologia Aplicadas à Farmácia) - UNESPAR - Campus Apucarana.

Aluno: Veronica Lippi Oliveira da Silva

Braga GÚ;BRAZ VS; SOUZA WM. Desenvolvimento de RT-PCR em tempo real para diagnóstico diferencial de Ckikungunya, Dengue e Zika. 2017. Exame de qualificação (Mestrando em Programa de Pós-Graduação em Biociências Aplicada à Farmácia) - Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP.

BRAZ VS. Avaliação de resumos e pôsteres apresentados no IX congresso Farmacêutico e V Jornada de Engenharia de Bioprocessos e Biotecnologia. 2019. Faculdade de Ciências Farmacêuticas do Câmpus de Araraquara-UNESP.

BRAZ, V.S.. Avaliação de relatórios científicos do programa PIBIC.. 2012. Universidade de São Paulo.

BRAZ, V.S.. Avaliação de relatório científico anual, em nível de Mestrado do Programa de Microbilogia.. 2012. Instituto de Ciências Biomédicas.

BRAZ, V.S.. Avaliação de pôsteres apresentados no Simpósio de Pesquisa do Instituto de Ciência Biomédicas.. 2011. Universidade de São Paulo.

BRAZ, V.S.. Avaliação de pôsteres apresentados no ?V Congresso do Instituto de Ciência Biomédicas?. 2009. Universidade de São Paulo.

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Comissão julgadora das bancas

Francisco Gorgonio da Nobrega

NOBREGA, F. G.. Microbiologia. 2000. Exame de qualificação (Doutorando em Microbiologia) - Universidade de São Paulo.

Luiziana Ferreira da Silva

SILVA, L. F.; MARQUES, M. V.. Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2006. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Luiziana Ferreira da Silva

SILVA, L. F.. Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2006. Exame de qualificação (Doutorando em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Beny Spira

SPIRA, B.. Caracterização do operon pep em Caulobacter crescentus. 2000. Dissertação (Mestrado em Microbiologia) - Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo.

Marli de Fátima Fiore

MARQUES, Marilis Do Valle;FIORE, M. F.; GOMES, Suely Lopes; SILVA, Luiziana Ferreira da; FARAH, Shaker Chuck. Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2006. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Marilis do Valle Marques

MARQUES, MV.; OUTROS,. Caracterização do operon pep de Caulobacter crescentus. 2001. Dissertação (Mestrado em Microbiologia) - Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo.

Marilis do Valle Marques

MARQUES, MV.; OUTROS,. Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2006. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Lucymara Fassarella Agnez

AGNEZ-LIMA, L. F.. Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2005. Exame de qualificação (Doutorando em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

Suely Lopes Gomes

FIORE, M. F.; FARAH, C. S.;GOMES, S. L.; SILVA, L. F.; MARQUES, M. V.. Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus. 2006. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo.

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Orientou

Daniel Paiva de Domenico

Estudo da expressão da região regulatória do sistema de dois componentes QseBC em Salmonella enterica serovar Typhimurium; Início: 2019; Orientação de outra natureza; Faculdade de Ciências Farmacêuticas do Câmpus de Araraquara-UNESP; (Orientador);

Thamires Andressa Marcelino

Obtenção da nanoemulsão contendo LED209 e seu microencapsulamento; Início: 2019; Orientação de outra natureza; BIOSMART NANOTECHNOLOGY; Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo; (Orientador);

Ana Beatriz Delforno

Investigação da atividade antivirulência in vivo da nanoemulsão de LED209 microencapsulada; Início: 2019; Orientação de outra natureza; BIOSMART NANOTECHNOLOGY; Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo; (Orientador);

Micaela Santana Ramos

Investigação de isolados ambientais de Paenibacillus sp; com potencial de atividade antimicrobiana; 2016; Iniciação Científica; (Graduando em Farmácia-Bioquímica) - Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP; Orientador: Vânia Santos Braz;

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Foi orientado por

Eliana Guedes Stehling

2018; Faculdade de Ciências Farmacêiticas de Ribeirão Preto, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Eliana Guedes Stehling;

Marilis do Valle Marques

Caracterização do operon pep de Caulobacter crescentus; 2001; Dissertação (Mestrado em Microbiologia) - Universidade de São Paulo, Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo; Orientador: Marilis do Valle Marques;

Marilis do Valle Marques

Caracterização de genes envolvidos na resposta a metais em Caulobacter crescentus; 2006; Tese (Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia)) - Universidade de São Paulo,; Orientador: Marilis do Valle Marques;

Marilis do Valle Marques

2010; Instituto de Ciências Biomédicas -USP, Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo; Marilis do Valle Marques;

Rodrigo da Silva Galhardo

2012; Universidade de São Paulo, Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo; Rodrigo da Silva Galhardo;

Cristiano Gallina Moreira

Estratégias tecnológicas para administração de um composto antivirulência no combate à Salmonelose em animais de criação; Início: 2019; Orientação de outra natureza; BIOSMART NANOTECHNOLOGY; Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo; (Orientador);

Cristiano Gallina Moreira

2018; Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior; Cristiano Gallina Moreira;

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Outras produções

MENCK, C.M. ; BRAZ, V.S. ; RODRIGUES, P.H. ; HENAO, J.E.M. . Defendi a tese! Onde encontrarei espaço profissional: nas Universidades ou nas empresas?. 2012. (Programa de rádio ou TV/Mesa redonda).

BRAZ, V.S. ; ALVES, F. I. A. . I Curso de Inverno Resposta a danos no DNA Implicações em envelhecimento e câncer. 2012. (Curso de curta duração ministrado/Outra).

MENCK, C.M. ; PIERULIVO, H. M. B. ; GALHARDO, R. S. ; QUAYLE, C. ; GARCIA, C. C. M. ; VIEIRA, D. B. ; GOMES, L. R. ; BRAZ, V.S. ; PELEGRINI, A. ; VESSONI, A. T. ; QUINET, A. ; LIMA, L. C. A. ; CASTRO, L. P. ; ALVES, F. I. A. . I Curso de Inverno Resposta a danos no DNA Implicações em envelhecimento e câncer.. 2012. (Curso de curta duração ministrado/Outra).

BRAZ, V.S. . Genética Bacteriana: Processos de Transferência Genética / Plasmídeos e Conjugação.. 2009. (Curso de curta duração ministrado/Especialização).

BRAZ, V.S. . Genética e Biologia Molecular Lato Sensu. 2008. (Curso de curta duração ministrado/Especialização).

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Projetos de pesquisa

  • 2019 - Atual

    Estratégias tecnológicas para administração de um composto antivirulência no combate à Salmonelose em animais de criação., Projeto certificado pela empresa BIOSMART NANOTECHNOLOGY em 20/02/2020., Descrição: Em 2017, o Brasil ocupou o segundo lugar como produtor de carne de frango e o quarto lugar de carne suína no ranque do mercado mundial, segundo relatório da ABPA (Associação Brasileira de Proteína Animal). Desta produção, 33,1% da carne de frango e 18,5% da carne suína foram destinadas para exportação, o que nos coloca em um mercado internacional competitivo e importante para a economia brasileira. Portanto, há uma preocupação na interrupção no uso dos antibióticos na criação de animais, os quais comumente são usados na prevenção de infecções e como promotores de crescimento, por outro lado é necessário um controle seguro de infecções por bactérias que possam inviabilizar a exportação e o consumo nacional. O aumento vertiginoso da resistência bacteriana, tanto em isolados clínicos como em isolados ambientais, vem se destacando e advertindo para um proferido início da era pós-antibiótica. Isso tem levado a uma grande preocupação mundial e uma necessidade urgente de desenvolver novas alternativas terapêuticas e/ou preventivas contra doenças infecciosas. Muitos países, principalmente na Europa, já fomentaram restrições ao uso de antibióticos como promotores de crescimento. Uma abordagem que vem se destacando é a utilização de compostos antivirulência que desarmam os patógenos bacterianos interrompendo a progressão para a doença, como o LED209, caracterizado com potencial capacidade antivirulência, sendo capaz de inibir a cascata de sinalização QseC, uma histidina quinase encontrada em muitas bactérias patogênicas, como Salmonella. QseC é um sensor de auto-indutor-3, produzido por bactérias, e dos adrenérgicos epinefrina/norepinefrina, produzidas pelo hospedeiro, sendo responsável por iniciar uma cascata de regulação de vários genes de virulência. No entanto, LED209 apresenta baixa solubilidade aquosa, sendo extremamente importante a busca por um carreador eficiente para esta molécula. O principal objetivo deste projeto é avaliar estratégias tecnológicas para administração deste composto antivirulência no combate à Salmonelose em animais de criação. Para tanto, pretende-se obter um veículo eficiente, como uma nanoemulsão, evitando-se dessa maneira o uso de solventes orgânicos tóxicos, seguido pelo microencapsulamento com polímeros pH-dependentes, o que promoverá a liberação da molécula LED209 no intestino do animal. Para demonstração de viabilidade, nesta fase 1, serão avaliados dois aspectos: (1) obtenção da nanoemulsão contendo LED209 e seu microencapsulamento; e (2) capacidade antivirulência da nanoemulsão de LED209 microencapsulada em camundongos desafiados com Salmonella. Após a viabilização do uso deste sistema, a proposta para a Fase 2 será inserir este sistema na ração e realizar testes em animais de maior porte, como suínos e aves, da mesma forma como são administrados os antibióticos promotores de crescimento.. , Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (2) . , Integrantes: Vânia Santos Braz - Coordenador / Cristiano Gallina Moreira - Integrante / Thamires Andressa Marcelino - Integrante / Ana Beatriz Delforno - Integrante / Hélida Gomes de Oliveira Barud - Integrante / Andréia Bagliotti Meneguin - Integrante / Marlus Chorilli - Integrante., Financiador(es): Fundação de Amparo a pesquisa de Sao Paulo - Auxílio financeiro.Número de orientações: 2

  • 2018 - 2019

    Mapeamento molecular da região regulatória da sinalização química via QseC em Salmonella enterica sorovar Typhimurium, Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) / Doutorado: (2) . , Integrantes: Vânia Santos Braz - Integrante / Cristiano Gallina Moreira - Coordenador / Patrick da Silva - Integrante / Fernanda Zani Manieri - Integrante / Daniel Paiva de Domenico - Integrante., Financiador(es): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - Bolsa.Número de orientações: 1

  • 2015 - 2018

    Investigação do padrão de expressão de genes envolvidos na degradação de herbicidas e na resistência ao aztreonam em isolados bacterianos ambientais, Descrição: As bactérias têm a capacidade de se adaptar a diferentes ambientes e, muitas vezes, a sua sobrevivência depende de estratégias como a adaptação metabólica e a resistência a antimicrobianos, permitindo o sucesso da sua sobrevivência a diversas condições ambientais, sendo no ambiente ou no hospedeiro. As bactérias do solo podem conter genes de resistência a antibióticos, recentemente chamado de ?resistoma?, e responsáveis por diferentes mecanismos, permitindo superar os antibióticos naturais presentes no ambiente. Uma das questões que pretende-se responder com o desenvolvimento do presente projeto é porque isolados de Pseudomonas aeruginosa encontrados em solos agrícolas apresentam um aumento na resistência aos antibióticos aztreonam e ticarcilina, que são frequentemente utilizados contra isolados clínicos. Embora a origem de muitos genes de resistência a antibióticos seja, provavelmente, de origem ambiental, os ambientes naturais ainda são subestimados e ainda predominam os estudos que envolvem microrganismos patogênicos em ambientes clínicos. Portanto, diante das modificações acontecendo no ambiente, levanta-se a urgência de avaliar o aumento de resistência no ambiente. Outra questão importante deste projeto se refere ao uso intensivo de herbicidas na agricultura, que tem aumentado o surgimento de resíduos tóxicos e consequente contaminação do solo. Esse processo leva a contaminação de águas subterrâneas, rios, lagos e oceanos. Por esta razão, há um grande interesse em se desenvolver biotecnologias para a descontaminação de ambientes poluídos por xenobióticos. Para tanto, é necessário entender como as bactérias de solo podem promover a mineralização ou a degradação parcial dos pesticidas com formação de compostos menos tóxicos. Após o isolamento de algumas bactérias de solo com potencial para a degradação dos herbicidas atrazina, 2,4-D e diuron, nosso objetivo é avaliar o padrão de expressão dos genes que compõem a via de degradação destes herbicidas. Portanto, determinar o potencial da microbiota em degradar tais compostos é o primeiro passo para a formação de consórcios bacterianos na tentativa de construir um consórcio eficaz na mineralização destes herbicidas.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Graduação: (1) / Mestrado acadêmico: (1) / Doutorado: (2) . , Integrantes: Vânia Santos Braz - Integrante / Eliana Guedes Stehling - Coordenador / Ana Flavia Tonelli Fernandes - Integrante / Jéssica Aparecida Silva Moretto - Integrante / João Pedro Rueda Furlan - Integrante / Micaela Santana Ramos - Integrante., Financiador(es): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - Bolsa., Número de produções C, T & A: 12 / Número de orientações: 1

  • 2011 - 2013

    ESTUDO DA DNA POLIMARASE DinB ENVOLVIDA NA MUTAGÊNESE E REPARO NA ALFA PROTEOBACTÉRIA Caulobacter crescentus., Descrição: O equilíbrio entre a mutagênese e o reparo deve ser rigorosamente regulado, seja uma mutação para um ganho ou perda de uma habilidade. Para solucionar este aparente paradoxo é necessário que haja manutenção de um grande número de genes que podem sofrer regulação em diversos níveis como transcricional, modulação pós-tradução e degradação protéica. O objetivo principal deste projeto é caracterizar melhor a proteína DinB de Caulobacter crescentus, uma DNA polimerase de baixa fidelidade encontrada em todos os organismos envolvida em processos de mutagênese e reparo. Contudo, já se sabe que DinB de Caulobacter crescentus não responde a UV, assim sendo, a nossa investigação será concentrada em determinar as possíveis interações protéicas que possam modular a sua atividade e determinar o seu padrão de expressão e o seu papel frente a diversos estímulos ambientais.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Integrantes: Vânia Santos Braz - Integrante / Rodrigo da Silva Galhardo - Coordenador., Financiador(es): Fundação de Amparo a pesquisa de Sao Paulo - Bolsa.

  • 2010 - 2011

    PROTEÍNAS RECOMBINANTES DE APLICAÇÃO EM SAÚDE DE HUMANO E ANIMAL, Descrição: Estudo de duas proteínas recombinantes de aplicação em saúde de humano e animal, são elas: Delângio e Activia A. Delângio é uma proteína homóloga à angiostatina, tanto a proteína angiostatina quanto os seus homólogos apresentam uma atividade anti-angiogênica, ou seja, inibem o crescimento de tumores. Por outro lado, a proteína activina A desempenha um papel importante na embriogênese, expressão e maturação de folículos ovarianos induzindo à superovulação.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Integrantes: Vânia Santos Braz - Integrante / Jorge Luiz Pesquero - Coordenador., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa.

  • 2008 - 2010

    ESTUDO DA REGULAÇÃO DE SISTEMAS DE RESPOSTA A METAIS NA ALFA-PROTEOBACTÉRIA Caulobacter crescentus, Descrição: O principal objetivo do projeto é identificar genes importantes para a resposta aos metais cádmio, zinco e ferro em Caulobacter crescentus e sua relação com o estresse oxidativo, definindo o papel dos reguladores transcricionais conhecidos Fur e OxyR, e de dois reguladores de transcrição específicos, identificados como importantes para a resposta a cádmio.... , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Doutorado: (1) . , Integrantes: Vânia Santos Braz - Integrante / Marilis do Valle Marques - Coordenador / José Freire da Silva Neto - Integrante / Valéria Cristina da Silva Italiani - Integrante., Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro., Número de produções C, T & A: 15

  • 2006 - 2009

    ESTUDO DE DOIS FATORES DE TRANSCRICAO DE CAULOBACTER CRECENTUS ENVOLVIDOS NA RESPOSTA A CADMIO., Descrição: Caulobacter crescentus é uma bactéria de vida livre, de grande potencial como biosensor, e que é capaz de responder rapidamente a diversas condições ambientais. A resistência a cádmio como a outros metais tóxicos se dá principalmente através de sistemas de efluxo, que devem ser rigorosamente regulados para manter um equilíbrio entre resistência e homeostase. Reguladores de transcrição podem ser ativadores ou repressores de sistemas de efluxo ou outros sistemas, tornando a célula resistente à toxicidade do metal. Este projeto tem como objetivo estudar dois reguladores de transcrição previamente identificados como envolvidos na resistência a cádmio em C. crescentus. Um regulador pertence à família BlaI e o outro à família LysR, e serão caracterizados principalmente o mecanismo de regulação destes fatores de transcrição quanto a resposta a cádmio e a sua possível relação com o estresse oxidativo.. , Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa. , Alunos envolvidos: Doutorado: (1) . , Integrantes: Vânia Santos Braz - Integrante / Marilis do Valle Marques - Coordenador., Financiador(es): Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo - Bolsa / Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa., Número de produções C, T & A: 14

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Prêmios

2010

Prêmio Destaque Publicação 2010, Departamento de Microbiollogia, ICB 2 USP.

2009

Menção Honrosa pela participação no Prémio Jovem Geneticista 2009, Sociedade Brasileira de Genética e GE Healthecare Life Sciences.

2008

Menção Honrosa, 26° Reunião de Genética de Microrganismos.

2006

Menção Honrosa, 25° Reunião de Genética de Microrganismos.

2005

Menção Honrosa em Publicação Científica, Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo.

Histórico profissional

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Experiência profissional

  • 2019 - Atual

    BIOSMART NANOTECHNOLOGY, BSnano

    Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Pesquisador Associado, Carga horária: 45, Regime: Dedicação exclusiva.

    Outras informações:
    Título: Estratégias tecnológicas para administração de um composto antivirulência no combate à Salmonelose em animais de criação

  • 2018 - 2019

    Faculdade de Ciências Farmacêuticas do Câmpus de Araraquara-UNESP

    Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Pós-doutorado, Carga horária: 45, Regime: Dedicação exclusiva.

    Outras informações:
    Título do projeto: Mapeamento molecular da região regulatória da sinalização química via QseC em Salmonella enterica sorovar Typhimurium.Agência bolsa: PNPD/CAPES. Supervisor: Dr. Cristiano Gallina Moreira.

    Atividades

    • 05/2019 - 06/2019

      Ensino, BIOCIÊNCIAS E BIOTECNOLOGIA APLICADAS À FARMÁCIA, Nível: Pós-Graduação,Disciplinas ministradas, TE: REGULAÇÃO DA EXPRESSÃO GÊNICA EM BACTÉRIAS

  • 2015 - 2018

    Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP

    Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Pós-doutorado, Carga horária: 50, Regime: Dedicação exclusiva.

    Outras informações:
    Título do projeto: Investigação do padrão de expressão de genes envolvidos na degradação de herbicidas e na resistência ao aztreonam em isolados bacterianos ambientais. Agência bolsa: PNPD/CAPES Supervisora: Dra. Eliana Guedes Stehling

  • 2017 - 2017

    Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP

    Vínculo: Colaborador, Enquadramento Funcional: Desenvolvimento de atividades didáticas., Carga horária: 6

    Outras informações:
    Programa de Capacitação Didática em Atividades dos Cursos de Graduação para pós-doutorados vinculados à Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto - USP (FCFRP-USP). Capacitação didática junto à disciplina de Bacteriologia (6042005) do departamento de Análise Clínicas, Toxicolígicas e Bromatológicas para o curso de Farmácia e Bioquímica, em nível de graduação, sob a supervisão da Profa. Dra. Eliana Guedes Stehling. As atividades desenvolvidas foram: (a) aplicação das provas juntamente com o professor responsável; (b) participação na aplicação das aulas práticas através de orientação, explicação; (c) Ministrou a aula prática de ?Leitura de Antibiograma? sob supervisão.

  • 2016 - 2016

    Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto, USP

    Vínculo: Colaborador, Enquadramento Funcional: Desenvolvimento de atividades didáticas., Carga horária: 6

    Outras informações:
    Programa de Capacitação Didática em Atividades dos Cursos de Graduação para pós-doutorados vinculados à Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Ribeirão Preto - USP (FCFRP-USP). Capacitação didática junto à disciplina de Microbiologia (6042034) do departamento de Análise Clínicas, Toxicolígicas e Bromatológicas para o curso de Odontologia, em nível de graduação, sob a supervisão da Profa. Dra. Eliana Guedes Stehling. As atividades desenvolvidas foram: (a) aplicação das provas juntamente com o professor responsável; (b) participação na aplicação das aulas práticas através de orientação, explicação;

    Atividades

    • 08/2017 - 12/2017

      Ensino, Farmácia-Bioquímica, Nível: Graduação,Disciplinas ministradas, Bacteriologia (6042005)

    • 08/2016 - 12/2016

      Ensino, Odontologia, Nível: Graduação,Disciplinas ministradas, Microbiologia (6042034)

  • 2011 - 2013

    Universidade de São Paulo

    Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Pós-doutorado, Carga horária: 50, Regime: Dedicação exclusiva.

    Outras informações:
    Título: Estudo da DNA Polimerase DinB envolvida na mutagênese e reparo na alfa proteobactéria Caulobacter crescentus. Agência Financiadora: FAPESP, período 09/11 a 10/12. Local: Instituto de Ciências Biomédicas, Departamento de Microbiologia, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP. Supervisor: Dr. Rodrigo da Silva Galhardo. Observação: após o mês 11/12 foi realizado sem bolsa/redimentos.

  • 2006 - 2009

    Universidade de São Paulo

    Vínculo: Pós-doutorado, Enquadramento Funcional: Pós-doutorado, Carga horária: 50, Regime: Dedicação exclusiva.

    Outras informações:
    Título: Estudo de dois fatores de transcrição envolvidos na resposta a cádmio. Agência Financiadora: FAPESP. Supervisora: Dra. Marilis do Valle Marques.

  • 2000 - 2000

    Instituto de Ciências Biomédicas 2

    Vínculo: Estagiário no PAE, Enquadramento Funcional: Desenvolvimento de atividades didáticas., Carga horária: 6

    Outras informações:
    Estágio como monitora no Programa de Aperfeiçoamento de Ensino - PAE da Universidade de São Paulo, tendo desenvolvido atividades didáticas junto à disciplina Microbiologia Básica do Departamento de Microbiologia do Instituto de Ciências Biomédicas - USP, em nível de graduação, sob a supervisão da Profa. Dra. Marilis do Valle Marques.

    Atividades

    • 02/2000 - 06/2000

      Ensino, Biologia, Nível: Graduação,Disciplinas ministradas, Microbiologia Básica

  • 2010 - 2011

    Empresa Proteobras

    Vínculo: Bolsista recém-doutor, Enquadramento Funcional: RHAE - Pesquisador na Empresa, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.

  • 2002 - 2002

    Clube Náutico Mogiano

    Vínculo: Celetista formal, Enquadramento Funcional: Professora, Carga horária: 6

    Outras informações:
    Professora de Biologia e Fundamentos de Saúde para o curso de Educação Física.

    Atividades

    • 02/2002 - 06/2002

      Ensino, Educação Física, Nível: Graduação,Disciplinas ministradas, Fundamentos de Saúde, Biologia Geral

  • 2002 - 2002

    Escola Comunitária de Arujá

    Vínculo: Celetista formal, Enquadramento Funcional: Professora, Carga horária: 10

    Outras informações:
    Lecionei aulas de laboratório de Física e Química para o 1 grau (5 a 8 séries) e lecionei aulas de Biologia para todos os anos do 2 grau, na ECA ? Escola Comunitária de Arujá - SP.

    Atividades

    • 02/2000 - 12/2000

      Ensino,,Disciplinas ministradas, Biologia

    • 02/2000 - 06/2000

      Ensino,,Disciplinas ministradas, Laboratório de Física e Química

  • 1996 - 1997

    Escola Estadual de Primeiro e Segundo Grau David Jorge Cury

    Vínculo: Celetista formal, Enquadramento Funcional: Professora, Carga horária: 36

    Outras informações:
    Lecionei aulas de Ciências para o 1 grau (5 e 8 séries) e Biologia para todos os anos do 2 grau na Escola Estadual de Primeiro e Segundo Grau David Jorge Cury, Suzano - SP.

    Atividades

    • 02/1996 - 12/1997

      Ensino,,Disciplinas ministradas, Biologia

    • 02/1996 - 12/1996

      Ensino,,Disciplinas ministradas, Ciências